Взаимосвязь между морфологией сперматозоидов и скоростью дробления эмбрионов при экстракорпоральном оплодотворении: ретроспективное исследование

Введение. Бесплодие является серьезной проблемой репродуктивного здоровья, и для улучшения возможности зачатия у бесплодных пар широко используется экстракорпоральное оплодотворение (ЭКО) с интрацитоплазматической инъекцией сперматозоидов (ИКСИ). Скорость дробления эмбриона является важным лабораторным индикатором его раннего развития, в то время как морфология сперматозоидов может отражать структурную и генетическую целостность сперматозоидов.

Цель: проанализировать взаимосвязь между морфологией сперматозоидов и скоростью дробления эмбрионов у пациентов, проходящих ЭКО/ИКСИ.

Материалы и методы. В аналитическом ретроспективном исследовании использовали медицинские карты бесплодных пар, проходивших ЭКО/ИКСИ в Центральной больнице общего профиля имени доктора Хасана Садикина (Бандунг) с января 2020 г. по декабрь 2024 г. В исследование были включены пациенты с полным анализом спермы на основе критериев Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ) от 2021 г. и данными о развитии эмбрионов до 2-го дня после оплодотворения. По морфологии сперматозоидов выделяли нормоспермию или тератозооспермию, а скорость дробления классифицировали как быструю, нормальную или медленную. Статистический анализ проводили с использованием критерия χ² с расчетом отношения шансов (ОШ) и 95 % доверительных интервалов (ДИ).

Результаты. Всего было проанализировано 159 записей. Морфология сперматозоидов была значимо связана со скоростью дробления (p = 0,001). Тератозооспермия была обнаружена в 97,0% случаев быстрого дробления, в 47,3% случаев нормального дробления и в 93,9% случаев медленного дробления. Тератозооспермия была связана с более высокими шансами быстрого дробления (ОШ = 35,636; 95 % ДИ = 4,673–271,760) и медленного дробления (ОШ = 17,261; 95 % ДИ = 3,903–76,340).

Заключение. Морфология сперматозоидов значимо связана со скоростью дробления эмбрионов при ЭКО/ИКСИ. Тератозооспермия может быть связана с изменением сроков раннего дробления эмбрионов и может служить дополнительным прогностическим параметром при консультировании по поводу ЭКО/ИКСИ и при лабораторной оценке.

1. Agarwal A., Baskaran S., Parekh N. et al. Male infertility. Lancet. 2021;397(10271):319–33. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(20)32667-2.

2. ESHRE Special Interest Group of Embryology and Alpha Scientists in Reproductive Medicine. The Vienna consensus: report of an expert meeting on the development of ART laboratory performance indicators. Reprod Biomed Online. 2017;35(5):494–510. https://doi.org/10.1016/j.rbmo.2017.06.015.

3. Berger D.S., Abdelhafez F., Russell H. et al. Severe teratozoospermia and its influence on pronuclear morphology, embryonic cleavage and compaction. Reprod Biol Endocrinol. 2011;9:37. https://doi.org/10.1186/1477-7827-9-37.

4. Wyns C., Vogiatzi P., Saleh R. et al. Sperm morphology value in assisted reproduction: dismantling an enigma and key takeaways for the busy clinician. Ther Adv Reprod Health. 2024;18:26334941241303888. https://doi.org/10.1177/26334941241303888.

5. Aydos O.S., Yükselten Y., Kaplan F. et al. Analysis of the correlation between sperm DNA integrity and conventional semen parameters in infertile men. Turk J Urol. 2015;41(4):191–7. https://doi.org/10.5152/tud.2015.98475.

6. Zhu D.L., Zhang H.G., Wang R.X et al. Re-evaluation of the value of sperm morphology in classical in vitro fertilization in a Northeastern Chinese population. J Int Med Res. 2019;47(9):4134–42. https://doi.org/10.1177/0300060519860324.

7. Moretti E., Signorini C., Noto D. et al. The relevance of sperm morphology in male infertility. Front Reprod Health. 2022;4:945351. https://doi.org/10.3389/frph.2022.945351.

8. Middelkamp S., van Tol H.T.A., Spierings D.C.J. et al. Sperm DNA damage causes genomic instability in early embryonic development. Sci Adv. 2020;6(16):eaaz7602. https://doi.org/10.1126/sciadv.aaz7602.

9. Burruel V., Klooster K., Barker C.M. et al. Abnormal early cleavage events predict early embryo demise: sperm oxidative stress and early abnormal cleavage. Sci Rep. 2014;4:6598. https://doi.org/10.1038/srep06598.

10. Hernández-Silva G., López-Torres A.S., Maldonado-Rosas I. et al. Effects of semen processing on sperm function: differences between swim-up and density gradient centrifugation. World J Mens Health. 2021;39(4):740–9. https://doi.org/10.5534/wjmh.200115.

11. Yaramareddy S., Valluri L.B., Gottipati S. et al. A retrospective observational study on effect of sperm morphology on embryo development after intracytoplasmic sperm injection. Int J Reprod Contraception, Obstet Gynecol. 2023;12(4):1071–7. https://doi.org/10.18203/2320-1770.ijrcog20230815.

12. Lehti M.S., Sironen A. Formation and function of sperm tail structures in association with sperm motility defects. Biol Reprod. 2017;97(4):522–36. https://doi.org/10.1093/biolre/iox096.

13. Ganeva R., Parvanov D., Velikova D. et al. Sperm morphology and DNA fragmentation after zona pellucida selection. Reprod Fertil. 2021;2(3):221–30. https://doi.org/10.1530/RAF-21-0041.

14. Jakubik-Uljasz J., Gill K., Rosiak-Gill A., Piasecka M. Relationship between sperm morphology and sperm DNA dispersion. Transl Androl Urol. 2020;9(2):405–15. https://doi.org/10.21037/tau.2020.01.31.

15. Nikolova S., Parvanov D., Georgieva V. et al. Impact of sperm characteristics on time‐lapse embryo morphokinetic parameters and clinical outcome of conventional in vitro fertilization. Andrology. 2020;8(5):1107–16. https://doi.org/10.1111/andr.12781.