Preview

Акушерство, Гинекология и Репродукция

Расширенный поиск

Микробиом женского репродуктивного тракта и ожирение

https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2024.555

Содержание

Перейти к:

Аннотация

Появление высокопроизводительного секвенирования 16S рРНК позволило выявить новые микроорганизмы и их взаимосвязи в женском репродуктивном тракте. Однако у пациенток с ожирением микробиом женского репродуктивного тракта, в отличие от микробиома кишечника, изучен недостаточно. В данном обзоре литературы проанализированы и охарактеризованы особенности микробиома наружных половых органов, влагалища, цервикального канала, матки и яичников у пациенток с избыточной массой тела и ожирением вне и во время беременности. Микробиом нижних отделов женского репродуктивного тракта у пациенток с ожирением характеризуется увеличением бактериального разнообразия, pH, снижением количества лактобактерий и увеличением числа облигатных анаэробов и дрожжеподобных грибов рода Candida. Микробиом эндометрия у пациенток с избыточной массой тела и ожирением изучен только в постменопаузе и характеризуется увеличением числа Proteobacteria. Данные об особенностях микробиома яичников у пациенток с ожирением в литературе отсутствуют. Механизмы, объясняющие изменение микробиома у пациенток с ожирением, по-видимому, заключаются в способности лептина и эстрона из жировой ткани ингибировать продукцию гонадотропных гормонов гипофиза, что приводит к блокаде овуляции и снижению синтеза эстрадиола у пациенток репродуктивного возраста. Результатом этого является снижение синтеза гликогена, количества лактобактерий и, как следствие данных изменений, увеличение pH и количества облигатных анаэробов, в том числе ассоциированных с бактериальным вагинозом. Cнижение массы тела может оказывать благоприятный эффект на состояние влагалищного микробиома, восстанавливая нормальное количество лактобактерий.

Для цитирования:


Лебедева О.П., Беляева Н.О., Иванникова Д.С., Алтухова О.Б., Грязнова М.В., Корнеева О.С., Сыромятников М.Ю. Микробиом женского репродуктивного тракта и ожирение. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2024;18(6):847-857. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2024.555

For citation:


Lebedeva O.P., Belyaeva N.O., Ivannikova D.S., Altukhova O.B., Gryaznova M.V., Korneeva O.S., Syromyatnikov M.Yu. The female reproductive tract microbiome and obesity. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2024;18(6):847-857. (In Russ.) https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2024.555

Введение / Introduction

Ожирение и избыточная масса тела являются одними из наиболее распространенных соматических заболеваний. В 2022 г., по данным Всемирной организации здравоохранения, в мире насчитывалось 2,5 млрд взрослых (старше 18 лет) с избыточной массой тела, 890 млн из них страдали ожирением [1]. В Российской Федерации доля людей с ожирением составляет около 26 %, с избыточной массой тела – 62 % [2]. Известно, что ожирение является значимым фактором риска сердечно-сосудистых заболеваний, сахарного диабета [3], онкологических заболеваний (рак толстого кишечника, молочной железы, эндометрия) [4]. Кроме того, оно вносит весомый вклад в развитие гинекологических заболеваний: нарушений менструального цикла, бесплодия, невынашивания, нарушений имплантации в циклах экстракорпорального оплодотворения (ЭКО) [5]. Патогенетические механизмы данных осложнений заключаются в увеличении выработки эстрогенов в жировой ткани и стимуляции синтеза андрогенов в яичниках в результате инсулинорезистентности и гиперинсулинемии. Это приводит к снижению продукции глобулина, связывающего половые гормоны, результатом чего является увеличение уровня свободных эстрогенов и андрогенов. Кроме того, выработка лептина и эстрона ведет к нарушению выработки гонадотропинов в гипофизе, что подавляет рост и созревание фолликулов. Гиперэстрогения приводит к структурным изменениям в эндометрии, в частности, к гиперплазии эндометрия [5–7].

Известно, что изменения уровней половых гормонов способны влиять на микробиоту женского репродуктивного тракта [8–10]. Следовательно, избыточная масса тела и ожирение могут быть одними из весомых факторов, влияющих на состояние микроэкологии женских половых путей. Существуют культуральные и некультуральные методы оценки микробиоты. Культуральные методы имеют ряд ограничений, наиболее значимыми из которых являются трудности транспортировки и культивирования анаэробных микроорганизмов, а также ряда аэробных бактерий, требующих строгого соблюдения температурного режима и иных параметров. Некультуральные методы исследования лишены этих недостатков. К данным методам относится полимеразная цепная реакция (ПЦР), которая позволяет выявить отдельные рода и виды микроорганизмов с помощью использования специфических праймеров, а также полногеномное секвенирование, включающее в себя секвенирование «методом дробовика» и секвенирование гена 16S рРНК, позволяющие оценить всю совокупность генов микроорганизмов, присутствующих в данной нише [11][12].

Однако большинство работ, посвященных влиянию ожирения на микробиом человека, касаются преимущественно микробиома кишечника [13][14]. Известно, что микробиом кишечника может влиять на возникновение ожирения. В экспериментах на мышах было показано, что дикая линия животных имела бóльшую массу тела, чем стерильная линия мышей, даже при наличии одинаковой диеты. После проведения трансплантации микробиоты кишечника от дикой линии мышей у стерильной линии наблюдалось увеличение массы тела даже без изменения объема потребляемой пищи [15]. Соотношение типов бактерий Firmicutes/Bacteroidetes в кишечнике может служить предиктором ожирения. В экспериментах на мышах присутствие Bacteroidetes оказывало протективный эффект и препятствовало формированию избыточной массы тела [16]. В клинических испытаниях на людях был выявлен благоприятный эффект не только Bacteroidetes, но и Prevotella [17][18]. Его присутствие в кишечной микробиоте при коррекции диеты приводило к более быстрому снижению массы тела по сравнению с пациентами, у которых этого рода выявлено не было [18].

Одним из значимых факторов ожирения является диета с большим количеством жиров. Наряду с высокой калорийностью, такая диета способна влиять на композицию кишечного микробиома, снижая количество Lactobacillus spp., Bifidobacterium spp. и Prevotella spp. [19][20]. Диета с большим количеством насыщенных жиров также стимулирует рост грамотрицательных микроорганизмов, что приводит к увеличению проницаемости кишечной стенки и диффузии липополисахаридов в кровеносное русло. Это, в свою очередь, приводит к активации толл-подобного рецептора 4 (англ. toll-like receptor 4, TLR4) и стимуляции продукции провоспалительных цитокинов, что, в свою очередь, является причиной субклинического воспаления, характерного для ожирения [21]. Омега-3 жирные кислоты, напротив, стимулируют рост лактобактерий, а мононенасыщенные жирные кислоты и омега-6 полиненасыщенные жирные кислоты приводят к увеличению числа бифидобактерий [22]. Прием пробиотиков также позволяет снизить и поддерживать нормальную массу тела как в экспериментах на животных, так и в клинических испытаниях на человеке [19][23].

Таким образом, наблюдается взаимное влияние микробиома кишечника на развитие ожирения, а также влияние образа жизни, преимущественно особенностей диеты у пациентов с ожирением, на микробиом кишечника.

Однако взаимосвязь избыточной массы тела и ожирения с особенностями микробиома женских половых путей недооценена вследствие ограниченного количества работ по данной теме. Данный обзор обобщает информацию об особенностях микробиома нижних и верхних отделов женского репродуктивного тракта у пациенток с ожирением.

Краткие сведения о нормальном микробиоме женского репродуктивного тракта / Briefly overviewed normal microbiome of the female reproductive tract

Микробиом женского репродуктивного тракта представляет собой совокупность всех генов микроорганизмов, населяющих данную нишу. Высокопроизводительное секвенирование гена 16S рРНК позволяет оценить совокупность бактерий, обитающих в различных отделах женских половых путей, их соотношение и разнообразие [24]. Ген 16S рРНК присутствует у всех видов бактерий. Он состоит из 9 вариабельных областей, которые окружены областями большей гомологии у разных видов бактерий. Идентичность микроорганизма на уровне рода, вида и иногда штамма может быть определена по последовательности ДНК вариабельной области. Полученная микробиомная картина также будет сильно зависеть от конкретной выбранной для секвенирования гипервариабельной области [25]. Метагеномное секвенирование «методом дробовика» включает в себя секвенирование ДНК всего микробиологического сообщества исследуемой ниши, а не только бактерий. Это потенциально позволяет исследовать не только состав, но и проводить профилирование метаболических путей в микробном сообществе. Кроме того, при наличии достаточного количества прочтений секвенирование «методом дробовика» имеет большую мощность для выявления менее распространенных таксонов, чем секвенирование 16S рРНК [26].

Микробиом наружных половых органов / External genitalia microbiome

Микробиом вульвы преимущественно содержит те же микроорганизмы, что и микробиом влагалища. Однако для него характерно большее разнообразие за счет присутствия микроорганизмов с поверхности кожи и из фекального микробиома. Основные роды бактерий, выявляемых в микробиоме вульвы, включают Lactobacillus, Corynebacterium, Staphylococcus и Prevotella [27].

Микробиом влагалища / Vaginal microbiome

Известно, что в норме доминирующими микроорганизмами во влагалище являются лактобактерии, обеспечивающие продукцию молочной кислоты и бактериоцинов, низкий уровень рН, колонизационную резистентность и поддержание напряженности местного иммунитета [28][29]. Количество бактерий взаимосвязано с уровнями половых гормонов, в большей степени эстрогенов, обеспечивающих продукцию гликогена во влагалищном эпителии [30][31]. Именно поэтому нарушения менструального цикла могут приводить к изменениям в составе микробиома [9].

В настоящее время для описания влагалищного микробиома используется классификация М.Т. France с соавт. (2020) [32], созданная на основе предшествующей классификации, предложенной J. Ravel с соавт. (2011) [33]. Согласно данной классификации, в четырех типах микробиома влагалища (CST I, CST II, CST III, CST V) доминирующими видами являются лактобактерии Lactobacillus spp. (L. crispatus, L. gasseri, L. iners, L. jensenii соответственно). В типе микробиома CST IV преобладает нелактобациллярная флора.

Показано, что в случае отсутствия доминирования лактобактерий возрастает риск заражения инфекциями, передаваемыми половым путем [34][35] и ВИЧ-инфекцией [36], невынашивания беременности, преждевременных родов, неудач имплантации и бесплодия [9][37–39].

Микробиом цервикального канала / Cervical canal microbiome

Цервикальный микробиом сходен с микробиомом влагалища, но имеет большее разнообразие и меньшее содержание Lactobacillus spp. [40][41].

Микробиом полости матки / Uterine microbiome

В полости матки количество микроорганизмов значительно ниже, чем в нижних отделах половых путей [42]. Доминирующими микроорганизмами в полости матки в репродуктивном возрасте в норме являются Lactobacillus spp. Также часто выявляются микроорганизмы родов Bifidobacterium, Streptococcus, Prevotella и Gardnerella [43][44].

В настоящее время общепринятой является классификация I. Moreno с соавт. (2016), в которой предложено разделять микробиом полости на 2 типа: с преобладанием лактобактерий (> 90 %, Lactobacillus-dominated, LD) и без преобладания лактобактерий (< 90 %, non-Lactobacillus-dominated, NLD) [43].

В течение менструального цикла наблюдаются динамические изменения микробиома эндометрия. В норме лактобактерии доминируют во всех фазах менструального цикла, однако данные о влиянии прогестерона на их количество во второй фазе цикла являются противоречивыми. По данным К. Vomstein с соавт. (2022), в лютеиновую фазу их количество возрастает [45], по результатам исследования К. Odawara с соавт. (2021), напротив, снижается [46]. Количество бактерий рода Proteobacteria также снижается после овуляции [45]. Назначение прогестинов пациенткам с аномальными маточными кровотечениями приводит к увеличению количества L. crispatus, некоторому снижению других видов лактобактерий и значительному снижению числа облигатных анаэробов [47].

Доминирование лактобактерий в эндометрии оказывает протективный эффект на течение беременности, способствуя снижению числа патогенных микроорганизмов в полости матки и увеличивая число живорождений после ЭКО. Нелактобациллярный тип микробиома, напротив, увеличивает частоту неудач имплантации [43][45][48][49], а также достоверно чаще выявляется у пациенток с эндометриозом [50][51]. Изменения микробиома матки выявлены также у пациенток с раком эндометрия. Предполагают, что условно-патогенные микроорганизмы могут играть роль в онкогенезе, что, вероятно, связано с продукцией факторов патогенности данными микроорганизмами [52][53].

Микробиом яичников / Ovarian microbiome

Ранее с помощью культуральных исследований было установлено, что в фолликулярной жидкости яичников могут присутствовать различные микроорганизмы, которые могут влиять на исходы ЭКО [54–56]. Однако в литературе отсутствуют работы, в которых нормальный микробиом яичника был изучен с помощью высокопроизводительного полногеномного секвенирования. Существуют исследования по изучению микробиома при раке яичников с помощью высокопроизводительного секвенирования, в которых в качестве контрольных образцов были использованы ткани маточных труб, полученные от здоровых пациенток, или ткани коллатерального яичника, полученные от пациенток с раком яичника [57][58]. Такие работы не позволяют судить о нормальном микробиоме яичников. Требуются дальнейшие исследования, позволяющие выявить особенности микробиома яичников у здоровых пациенток репродуктивного возраста.

Микробиом женского репродуктивного тракта и ожирение / The microbiome of the female reproductive tract and obesity

Мы провели анализ оригинальных статей, посвященных особенностям микробиома женских половых путей у пациенток с избыточной массой тела и ожирением. Было установлено, что доля оригинальных статей среди всех публикаций по данной тематике невелика. В целом ряде оригинальных работ отсутствовала контрольная группа (здоровые пациентки), или пациентки с ожирением не были выделены в отдельные подгруппы. Такие работы были исключены из анализа.

Работы, включенные в анализ, представлены в Приложении 1 (см. электронную версию журнала: https://www.gynecology.su). Однако большинство работ имеют ряд ограничений, что не позволяет на основании данных исследований сделать однозначный вывод о влиянии ожирения на состав микробиома. В частности, в некоторых работах в исследуемых группах были объединены женщины репродуктивного возраста, пациентки в пре- и в постменопаузе [59][60]. Такой дизайн исследования нельзя считать корректным, так как известно, что у пациенток в постменопаузе из-за дефицита эстрогенов наблюдается снижение лактобациллярной флоры [61]. Объединение женщин в постменопаузе с пациентками репродуктивного возраста создает группу, гетерогенную по исследуемому признаку, что не позволяет провести правильный статистический анализ результатов. Вторым существенным ограничением в двух работах является маленькая выборка в исследуемых группах (n < 10) [62][63], что также не позволяет сделать точных выводов об изучаемых признаках. Мы включили вышеуказанные статьи в выборку, однако исключили их из финальных выводов, представленных на рисунке 1, а также из обсуждения.

Рисунок 1. Микробиом женского репродуктивного тракта у пациенток с избыточной массой тела и ожирением [рисунок авторов].

Figure 1. The microbiome of the female reproductive tract in overweight and obese patients [drawn by authors].

В целом, для пациенток с ожирением было характерно снижение количества лактобактерий и увеличение бактериального разнообразия во всех отделах репродуктивного тракта. Данная закономерность была выявлена как у женщин репродуктивного возраста, так и у женщин в пре- и постменопаузе. Как было указано выше, снижение количества лактобактерий напрямую влияет на местную иммунореактивность, увеличивает pH, приводит к снижению продукции лактобактериями бактериоцинов. В результате этого увеличивается риск бесплодия, неудач имплантации при ЭКО, невынашивания беременности, преждевременных родов, эндометриоза и рака женских половых органов, заражения инфекциями, передаваемыми половым путем. Увеличение α-разнообразия во влагалище, в отличие от кишечника, часто является маркером патологического процесса, чаще всего бактериального вагиноза [40]. Оно связано со снижением количества лактобактерий, которые в норме являются доминирующими микроорганизмами, и увеличением числа других бактерий, в том числе обладающих патогенными свойствами [73].

Микробиом вульвы у пациенток с ожирением отличается большим α- и β-разнообразием, снижением доли Lactobacillus spp., высоким рН и увеличением количества Anaerococcus и Corynebacterium [65]. Коринебактерии способны продуцировать молочную кислоту, что способствует снижению рН, а также разрушать бактериальные биопленки [74]. Вследствие этого коринебактерии в настоящее время считаются представителями нормальной микрофлоры. По-видимому, их увеличение является компенсаторным в связи со снижением количества лактобактерий.

Микробиом влагалища у пациенток с избыточной массой тела и ожирением изучен в большей степени, чем микробиом других ниш женского репродуктивного тракта. При ожирении у небеременных репродуктивного возраста во влагалище наблюдается увеличение рН и бактериального разнообразия [66][68], снижение числа Lactobacillus [68], увеличение количества дрожжеподобных грибов рода Candida [67], а также анаэробных бактерий [66][68]. В постменопаузе у женщин с ожирением наблюдается увеличение бактериального разнообразия и количества анаэробных бактерий рода Prevotella [66]. Данные изменения аналогичны особенностям микробиома, выявленным в том же исследовании у пациенток репродуктивного возраста. Интересно, что в кишечнике Prevotella, наоборот, обладает протективным действием и способствует снижению массы тела [17][18].

Исследование О. Raglan с соавт. (2021) продемонстрировало, что снижение массы тела приводит к нормализации влагалищного микробиома и восстановлению количества лактобактерий [59].

У беременных изменения во влагалище сходны с теми, которые наблюдаются вне беременности. Они включают увеличение бактериального разнообразия, pH влагалищной слизи, а также увеличение количества бактерий родов Peptoniphilus и Anaerococcus [71].

В цервикальном канале с увеличением индекса массы тела (ИМТ) количество L. crispatus достоверно снижается, а L. iners возрастает. Наблюдается увеличение соотношения L. iners/L. crispatus у женщин с ожирением моложе 50 лет [60].

Микробиом матки у пациенток репродуктивного возраста с избыточной массой тела и ожирением не описан. Существуют единичные исследования по данной тематике, которые не содержат исследований микробиома эндометрия у здоровых женщин в качестве контрольной группы, поэтому судить о его особенностях не представляется возможным. В постменопаузе избыточная масса тела и ожирение не влияют на уровень лактобактерий в полости матки, однако у пациенток с ожирением в сочетании с раком эндометрия наблюдается увеличение бактерий рода Proteobacteria [72].

Исследования микробиома фолликулярной жидкости, а также поверхности яичника у пациенток с избыточной массой тела и ожирением отсутствуют.

Все вышеуказанные особенности микробиома различных отделов женского репродуктивного тракта в исследованиях с достаточным количеством наблюдений (не менее 10 пациенток в каждой группе) и корректным разделением на группы по клиническим данным представлены на рисунке 1.

Механизмы вышеуказанных нарушений микробиома у пациенток с ожирением до конца не изучены. Известно, что норме у женщин репродуктивного возраста эстрадиол способствует продукции гликогена, являющегося питательным субстратом для лактобактерий в эпителии влагалища [75][76], а также увеличивает их способность к адгезии к эпителиоцитам [77]. У пациенток с ожирением в репродуктивном возрасте в жировой ткани возрастает продукция лептина и эстрона. В результате этого нарушается выработка гонадотропных гормонов гипофиза, что ведет к ановуляции и снижению уровня эстрадиола. Известно, что у пациенток с избыточной массой тела и ожирением (ИМТ > 25 кг/м²) наблюдается снижение уровня эстрадиола по сравнению женщинами, имеющими нормальную массу тела [78]. Эстрон же обладает слабой способностью индуцировать синтез гликогена эпителиоцитами влагалища [79]. В свою очередь, низкий уровень гликогена ассоциирован со снижением количества Lactobacillus и продукции молочной кислоты и, как следствие, более высоким pH [79][80]. Результатом повышения рН является увеличение доли облигатных анаэробов, в том числе ассоциированных с бактериальным вагинозом.

Заключение / Conclusion

Таким образом, можно сделать вывод, что к особенностям микробиома в нижних отделах женского репродуктивного тракта у пациенток с избыточным весом и ожирением относятся: увеличение бактериального разнообразия, сдвиг pH влагалищной слизи в щелочную сторону, снижение количества Lactobacillus, увеличение числа облигатных анаэробов и грибов рода Candida.

У пациенток с ожирением в постменопаузе в полости матки наблюдается увеличение числа бактерий рода Proteobacteria. Данные об особенностях микробиома эндометрия при ожирении у женщин репродуктивного возраста, а также данные о микробиоме яичников в литературе отсутствуют.

Cнижение массы тела может оказывать благоприятный эффект на состояние микробиома, восстанавливая нормальное количество лактобактерий.

Необходимы дальнейшие исследования, направленные на изучение нормализации массы тела как дополнительного фактора коррекции микробиома женского репродуктивного тракта. Это позволит улучшить репродуктивные исходы и предотвратить развитие гинекологических заболеваний, в том числе онкологических заболеваний женской репродуктивной системы.

Список литературы

1. Obesity and overweight. World Health Organization, 2024. Режим доступа: https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/obesity-and-overweight. [Дата обращения: 31.07.2024].

2. Дедов И.И., Шестакова М.В., Галстян Г.Р. Распространенность сахарного диабета 2 типа у взрослого населения России (исследование NATION). Сахарный диабет. 2016;19(2):104–12. https://doi.org/10.14341/DM2004116-17.

3. Дедов И.И., Мокрышева Н.Г., Мельниченко Г.А. и др. Ожирение. Клинические рекомендации. Consilium medicum. 2021;23(4):311–25. https://doi.org/10.26442/20751753.2021.4.200832.

4. Sarma S., Sockalingam S., Dash S. Obesity as a multisystem disease: Trends in obesity rates and obesity-related complications. Diabetes Obes Metab. 2021;23 Suppl 1:3–16. https://doi.org/10.1111/dom.14290.

5. Демидова Т.Ю., Грицкевич Е.Ю. Роль ожирения в развитии репродуктивных нарушений и возможности преодоления рисков. РМЖ. 2018;11(II):105–9.

6. Греков Е.А., Дзидзария А.Г., Тюзиков И.А. Глобулин, связывающий половые стероиды: эволюция представлений о биологических функциях и диагностическом значении в норме и при патологии. Андрология и генитальная хирургия. 2024;25(1):49–62. https://doi.org/10.62968/2070-9781-2024-25-1-49-62.

7. Bellver J., Marín C., Lathi R.B. et al. Obesity affects endometrial receptivity by displacing the window of implantation. Reprod Sci. 2021;28(11):3171–80. https://doi.org/10.1007/s43032-021-00631-1.

8. Козлова А.А., Николаева А.В., Припутневич Т.В. и др. Микробиом влагалища женщины во время беременности и в послеродовом периоде: динамика, взаимосвязь с кишечной микрофлорой, влияние на становление микробиоты новорожденного. Акушерство и гинекология: Новости. Мнения. Обучения. 2021;9(4):71–8. https://doi.org/10.33029/2303-9698-2021-9-4-71-78.

9. Лебедева О.П., Грязнова М.В., Козаренко О.Н. и др. Микробиом влагалища при нарушениях менструального цикла (обзор). Научные результаты биомедицинских исследований. 2021;7(4):433–50. https://doi.org/10.18413/2658-6533-2021-7-4-0-9.

10. Лебедева О.П., Калуцкий П.В. Антиинфекционная защита влагалища на фоне применения низкодозированных монофазных контрацептивов. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2007;(1):67–70.

11. Vallianou N.G., Skourtis A., Kounatidis D. et al. The role of the respiratory microbiome in the pathogenesis of aspiration pneumonia: implications for diagnosis and potential therapeutic choices. Antibiotics (Basel). 2023;12(1):140. https://doi.org/10.3390/antibiotics12010140.

12. Smirnova Y.D., Gryaznova M.V., Burakova I.Y. et al. Study of microbiome aberrations in patients with irritable bowel syndrome with diarrhea by next-generation sequencing. Research Results in Biomedicine. 2023;9(4):446–60. https://doi.org/10.18413/2658-6533-2023-9-4-0-2.

13. Aoun A., Darwish F., Hamod N. The Influence of the gut microbiome on obesity in adults and the role of probiotics, prebiotics, and synbiotics for weight loss. Prev Nutr Food Sci. 2020;25(2):113–23. https://doi.org/10.3746/pnf.2020.25.2.113.

14. Zsálig D., Berta A., Tóth V. et al. A review of the relationship between gut microbiome and obesity. Applied Sciences. 2023;13(1):610. https://doi.org/10.3390/app13010610.

15. Bäckhed F., Ding H., Wang T. et al. The gut microbiota as an environmental factor that regulates fat storage. Proc Natl Acad Sci U S A. 2004;101(44):15718–23. https://doi.org/10.1073/pnas.0407076101.

16. Magne F., Gotteland M., Gauthier L. et al. The Firmicutes/Bacteroidetes ratio: a relevant marker of gut dysbiosis in obese patients? Nutrients. 2020;12(5):1474. https://doi.org/10.3390/nu12051474.

17. Hu H.-J., Park S-G., Jang H.B. et al. Obesity alters the microbial community profile in Korean adolescents. PLoS One. 2015;10(7):e0134333. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0134333.

18. Christensen L., Vuholm S., Roager H.M. et al. Prevotella abundance predicts weight loss success in healthy, overweight adults consuming a whole-grain diet ad Libitum: a post hoc analysis of a 6-Wk Randomized Controlled Trial. J Nutr. 2019;149(12):2174–81. https://doi.org/10.1093/jn/nxz198.

19. Mazloom K., Siddiqi I., Covasa M. Probiotics: how effective are they in the fight against obesity? Nutrients. 2019;11(2):258. https://doi.org/10.3390/nu11020258.

20. Cani P.D., Amar J., Iglesias M.A. et al. Metabolic endotoxemia initiates obesity and insulin resistance. Diabetes. 2007;56(7):1761–72. https://doi.org/10.2337/db06-1491.

21. Kim K.-A., Gu W., Lee I.-A. et al. High fat diet-induced gut microbiota exacerbates inflammation and obesity in mice via the TLR4 signaling pathway. PLoS One. 2012;7(10):e47713. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0047713.

22. Malesza I.J., Malesza M., Walkowiak J. et al. High-fat, western-style diet, systemic inflammation, and gut microbiota: a narrative review. Cells. 2021;10(11):3164. https://doi.org/10.3390/cells10113164.

23. Sergeev I.N., Aljutaily T., Walton G. et al. Effects of synbiotic supplement on human gut microbiota, body composition and weight loss in obesity. Nutrients. 2020;12(1):222. https://doi.org/10.3390/nu12010222.

24. Fraher M.H., O’Toole P.W., Quigley E.M.M. Techniques used to characterize the gut microbiota: a guide for the clinician. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2012;9(6):312–22. https://doi.org/10.1038/nrgastro.2012.44.

25. Gilbert J.A., Blaser M.J., Caporaso J.G. et al. Current understanding of the human microbiome. Nat Med. 2018;24(4):392–400. https://doi.org/10.1038/nm.4517.

26. Durazzi F., Sala C., Castellani G. et al. Comparison between 16S rRNA and shotgun sequencing data for the taxonomic characterization of the gut microbiota. Sci Rep. 2021;11(1):3030. https://doi.org/10.1038/s41598-021-82726-y.

27. Pagan L., Ederveen R. AM., Huisman B.W. et al. The human vulvar microbiome: a systematic review. Microorganisms. 2021;9(12):2568. https://doi.org/10.3390/microorganisms9122568.

28. Лебедева О.П., Иванникова В.М. Антиинфекционная защита влагалища у женщин репродуктивного возраста (мини-обзор). Проблемы репродукции. 2023;29(6):95–101. https://doi.org/10.17116/repro20232906195.

29. Gupta P., Singh M.P., Goyal K. Diversity of vaginal microbiome in pregnancy: deciphering the obscurity. Front Public Health. 2020;8:326. https://doi.org/10.3389/fpubh.2020.00326.

30. Moreno I., Simon C. Deciphering the effect of reproductive tract microbiota on human reproduction. Reprod Med Biol. 2019;18(1):40–50. https://doi.org/10.1002/rmb2.12249.

31. Moosa Y., Kwon D., Oliveira T.Wong E.B. Determinants of vaginal microbiota composition. Front Cell Infect Microbiol. 2020;10:467. https://doi.org/10.3389/fcimb.2020.00467.

32. France M.T., Ma B., Gajer P. et al. VALENCIA: a nearest centroid classification method for vaginal microbial communities based on composition. Microbiome. 2020;8(1):166. https://doi.org/10.1186/s40168-020-00934-6.

33. Ravel J., Gajer P., Abdo Z. et al. Vaginal microbiome of reproductive-age women. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011;108 Suppl 1(Suppl 1):4680–7. https://doi.org/10.1073/pnas.1002611107.

34. Brotman R.M., Bradford L.L., Conrad M. et al. Association between Trichomonas vaginalis and vaginal bacterial community composition among reproductive-age women. Sexually transmitted diseases. 2012;39(10):807–12. https://doi.org/10.1097/OLQ.0b013e3182631c79.

35. Anahtar M.N., Byrne E.H., Doherty K.E. et al. Cervicovaginal bacteria are a major modulator of host inflammatory responses in the female genital tract. Immunity. 2015;42(5):965–76. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2015.04.019.

36. Gosmann C., Anathar M.A., Handley S.A. et al. Lactobacillus-deficient cervicovaginal bacterial communities are associated with increased HIV acquisition in young South African women. Immunity. 2017;46(1):29–37. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2016.12.013.

37. Gryaznova M., Kozarenko O., Smirnova Y. et al. Cervical and vaginal microbiomes in early miscarriages and ongoing pregnancy with and without dydrogesterone usage. Int J Mol Sci. 2023;24(18):13836. https://doi.org/10.3390/ijms241813836.

38. Lebedeva O.P., Popov V.N., Syromyatnikov M.Y. et al. Female reproductive tract microbiome and early miscarriages. APMIS. 2023;131(2):61–76. https://doi.org/10.1111/apm.13288.

39. Турсунова Н.Б., Лебедева О.П., Алтухова О.Б., Нагорный А.В. Современный взгляд на роль микробиома женского репродуктивного тракта в исходах ЭКО. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2023;17(4):512–25. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2023.433.

40. Chen C., Song X., Wei W. et al. The microbiota continuum along the female reproductive tract and its relation to uterine-related diseases. Nat Commun. 2017;8(1):875. https://doi.org/10.1038/s41467-017-00901-0.

41. Gryaznova M., Lebedeva O., Kozarenko O. et al. Lower genital tract microbiome in early pregnancy in the Eastern European population. Microorganisms. 2022;10(12):2368. https://doi.org/10.3390/microorganisms10122368.

42. Mitchell C.M., Haick A., Nkwopara E. et al. Colonization of the upper genital tract by vaginal bacterial species in non-pregnant women. Am J Obstet Gynecol. 2015;212(5):611.e1–9. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2014.11.043.

43. Moreno I., Codoner F.M., Vilella F. et al. Evidence that the endometrial microbiota has an effect on implantation success or failure Am J Obstet Gynecol. 2016;215(6):684–703. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2016.09.075.

44. Kyono K., Hashimoto T., Nagai Y., Sakuraba Y. Analysis of endometrial microbiota by 16S ribosomal RNA gene sequencing among infertile patients: a single‐center pilot study. Reprod Med Biol. 2018;17(3): 297–306. https://doi.org/10.1002/rmb2.12105.

45. Vomstein K., Reider S., Böttcher B. et al. Uterine microbiota plasticity during the menstrual cycle: Differences between healthy controls and patients with recurrent miscarriage or implantation failure. J Reprod Immunol. 2022;151:103634. https://doi.org/10.1016/j.jri.2022.103634.

46. Odawara K., Akino R., Sekizawa A. et al. Examination of clinical factors affecting intrauterine microbiota. Reprod Fertil. 2021;2(1):1–6. https://doi.org/10.1530/RAF-20-0030.

47. Pelzer E.S., Willner D., Buttini M., Huygens F. A role for the endometrial microbiome in dysfunctional menstrual bleeding. Antonie van Leeuwenhoek. 2018;111(6):933–43. https://doi.org/10.1007/s10482-017-0992-6.

48. Moreno I., Garcia-Grau I., Perez-Villaroya D. et al. Endometrial microbiota composition is associated with reproductive outcome in infertile patients. Microbiome. 2022;10(1):1. https://doi.org/10.1186/s40168-021-01184-w.

49. Баринова В.В. Кузнецова Н.Б., Буштырева И.О. и др. Микробиом эндометрия у женщин с многократными неудачами экстракорпорального оплодотворения. Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2021;20(3):5–11. https://doi.org/10.20953/1726-1678-2021-3-5-11.

50. Khan K.N., Fujishita A., Masumoto H. et al. Molecular detection of intrauterine microbial colonization in women with endometriosis. Eur J Obst Gynecol Reprod Biol. 2016;199:69–75. https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2016.01.040.

51. Wei W., Zhang X., Tang H. et al. Microbiota composition and distribution along the female reproductive tract of women with endometriosis. Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2020;19(1):15. https://doi.org/10.1186/s12941-020-00356-0.

52. Lu W., He F., Lin Z. et al. Dysbiosis of the endometrial microbiota and its association with inflammatory cytokines in endometrial cancer. Int J Cancer. 2021;148(7):1708–16. https://doi.org/10.1002/ijc.33428.

53. Walther-António M.R.S, Chen J., Multinu F. et al. Potential contribution of the uterine microbiome in the development of endometrial cancer. Genome Med. 2016;8(1):122. https://doi.org/10.1186/s13073-016-0368-y.

54. Franasiak J.M., Scott R.T. Reproductive tract microbiome in assisted reproductive technologies. Fertil Steril. 2015;104(6):1364–71. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2015.10.012.

55. Pelzer E.S., Allan J.A., Theodoropoulos C. et al. Hormone-dependent bacterial growth, Persistence and biofilm formation – a pilot study investigating human follicular fluid collected during IVF cycles. PLoS One. 2012;7(12):e49965. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0049965.

56. Pelzer E.S., Allan J.A., Cunningham K. et al. Microbial colonization of follicular fluid: alterations in cytokine expression and adverse assisted reproduction technology outcomes. Hum Reprod. 2011;26(7):1799–812. https://doi.org/10.1093/humrep/der108.

57. Zhou B., Sun C., Huang J. et al. The biodiversity composition of microbiome in ovarian carcinoma patients. Sci Rep. 2019;9(1):1691. https://doi.org/10.1038/s41598-018-38031-2.

58. Banerjee S., Tian Tian, Wei J. et al. The ovarian cancer oncobiome. Oncotarget. 2017;8(22):36225–45. https://doi.org/10.18632/oncotarget.16717.

59. Raglan O., MacIntyre D.A., Mitra A. et al. The association between obesity and weight loss after bariatric surgery on the vaginal microbiota. Microbiome. 2021;9(1):124. https://doi.org/10.1186/s40168-021-01011-2.

60. Oh H.Y., Seo S.S., Kong J.S. et al. Association between obesity and cervical microflora dominated by lactobacillus iners in Korean women. J Clin Microbiol. 2015;53(10):3304–9. https://doi.org/10.1186/s40168-021-01011-2.

61. de Oliveira N.S., de Lima A.B.F., de Brito J.C.R. et al. Postmenopausal vaginal microbiome and microbiota. Front Reprod Health. 2022;3:780931. https://doi.org/10.3389/frph.2021.780931.

62. Faucher M.A., Greathouse K.L., Hastings-Tolsma M. et al. Exploration of the vaginal and gut microbiome in African American women by body mass index, class of obesity, and gestational weight gain: a pilot study. Am J Perinatol. 2019;37(11):1160–72. https://doi.org/10.1055/s-0039-1692715.

63. Zheng S., Chen H., Yang H. et al. Differential enrichment of bacteria and phages in the vaginal microbiomes in PCOS and obesity: shotgun sequencing analysis. Front Microbiomes. 2024;2:1229723. https://doi.org/10.3389/frmbi.2023.1229723.

64. Vongsa R., Hoffman D., Shepard K. et al. Comparative study of vulva and abdominal skin microbiota of healthy females with high and average BMI. BMC Microbiol. 2019;19(1):16. https://doi.org/10.1186/s12866-019-1391-0.

65. Fettweis J.M., Brooks J.P., Serrano M.G. et al. Differences in vaginal microbiome in African American women versus women of European ancestry. Microbiology. 2014;160(Pt 10):2272–82. https://doi.org/10.1099/mic.0.081034-0.

66. Si J., You H.J., Yu J. et al. Prevotella as a hub for vaginal microbiota under the Influence of host genetics and their association with obesity. Cell Host Microbe. 2017;21(1):97–105. https://doi.org/10.1016/j.chom.2016.11.010.

67. Tortelli B.A., Lewis W.G., Allsworth J.E. et al. Associations between the vaginal microbiome and Candida colonization in women of reproductive age. Am J Obstet Gynecol. 2020;222(5):471.e1–471.e9. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2019.10.008.

68. Allen N.G, Edupuganti G.L, Edwards D.J. et al. The vaginal microbiome in women of reproductive age with healthy weight versus overweight/obesity. Obesity (Silver Spring). 2022;30(1):142–52. https://doi.org/10.1002/oby.23306.

69. Ling Z., Liu X., Chen W. et al. The restoration of the vaginal microbiota after treatment for bacterial vaginosis with metronidazole or probiotics. Microb Ecol. 2013;65(3):773–80. https://doi.org/10.1007/s00248-012-0154-3.

70. Fettweis J.M., Serrano M.G., Brooks P. et al. The vaginal microbiome and preterm birth. Nat Med. 2019;25(6):1012–21. https://doi.org/10.1038/s41591-019-0450-2.

71. Ingram K., Eko E.N., Nunziato J. et al. Impact of obesity on the perinatal vaginal environment and bacterial microbiome: effects on birth outcomes. J Med Microbiol. 2024;73(8):001874. https://doi.org/10.1099/jmm.0.001874.

72. Kaakoush N.O., Olzomer E.M., Kosasih M. et al. Differences in the active endometrial microbiota across body weight and cancer in humans and mice. Cancers. 2022;14(9):2141. https://doi.org/10.3390/cancers14092141.

73. Kim M.J., Lee S., Kwon M.Y., Kim M. Clinical significance of composition and functional diversity of the vaginal microbiome in recurrent vaginitis. Front Microbiol. 2022;13:851670. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.851670.

74. Гладышева И.В., Черкасов С.В. Коринебактерии вагинального микробиома – потенциальные патогены или перспективные пробиотики? Бюллетень Оренбургского научного центра УрО РАН. 2019;(3):22. https://doi.org/10.24411/2304-9081-2019-13022.

75. Spear G.T., French A.L., Gilbert D. et al. Human α-amylase present in lower-genital-tract mucosal fluid processes glycogen to support vaginal colonization by Lactobacillus. J Infect Dis. 2014;210(7):1019–28. https://doi.org/10.1093/infdis/jiu231.

76. Garg A., Ellis L.B., Love R.L. et al. Vaginal microbiome in obesity and its impact on reproduction. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol. 2023;90:02365. https://doi.org/10.1016/j.bpobgyn.2023.102365.

77. Clabaut M., Suet A., Racine P-J. et al. Effect of 17β-estradiol on a human vaginal Lactobacillus crispatus strain. Sci Rep. 2021;11(1):7133. https://doi.org/10.1038/s41598-021-86628-x.

78. Rehman R., Hussain Z., Faraz N. Effect of estradiol levels on pregnancy outcome in obese women. J Ayub Med Coll Abbottabad. 2012;24(3–4):3–5.

79. Mirmonsef P., Modur S., Burgad D. et al. Exploratory comparison of vaginal glycogen and Lactobacillus levels in premenopausal and postmenopausal women. Menopause. 2015;22(7):702–9. https://doi.org/10.1097/GME.0000000000000397.

80. Mirmonsef P., Hotton A.L., Gilbert D. et al. Glycogen levels in undiluted genital fluid and their relationship to vaginal pH, estrogen, and progesterone. PLoS One. 2016;11(4):e0153553. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0153553.


Об авторах

О. П. Лебедева
ФГАОУ ВО «Белгородский государственный национальный исследовательский университет»; ФГБОУ ВО «Воронежский государственный университет инженерных технологий»
Россия

Лебедева Ольга Петровна, д.м.н.

Scopus Author ID: 55655876400. WoS ResearcherID: E-5969-2015.

308015 Белгород, ул. Победы, д. 85

394036 Воронеж, проспект Революции, д. 19



Н. О. Беляева
ФГАОУ ВО «Белгородский государственный национальный исследовательский университет»; ГБУЗ «Инфекционная больница Калининградской области», Центр по борьбе со СПИД
Россия

Беляева Наталья Олеговна 

308015 Белгород, ул. Победы, д. 85

236016 Калининград, ул. Фрунзе, д. 48



Д. С. Иванникова
ФГАОУ ВО «Белгородский государственный национальный исследовательский университет»; ООО «Синапс Тех»
Россия

Иванникова Дарья Сергеевна

308015 Белгород, ул. Победы, д. 85

\119530 Москва, Очаковское шоссе, д. 28, стр.2



О. Б. Алтухова
ФГАОУ ВО «Белгородский государственный национальный исследовательский университет»; ОГБУЗ «Белгородская областная клиническая больница Святителя Иоасафа»
Россия

Алтухова Оксана Борисовна, д.м.н.

Scopus Author ID: 57216900558.

308015 Белгород, ул. Победы, д. 85

308007 Белгород, ул. Некрасова, д. 8/9



М. В. Грязнова
ФГБОУ ВО «Воронежский государственный университет инженерных технологий»
Россия

Грязнова Мария Владимировна, магистр биологических наук

Scopus Author ID: 57205273012.

394036 Воронеж, проспект Революции, д. 19



О. С. Корнеева
ФГБОУ ВО «Воронежский государственный университет инженерных технологий»
Россия

Корнеева Ольга Сергеевна, д.б.н., проф.

Scopus Author ID: 6602815904. 

394036 Воронеж, проспект Революции, д. 19



М. Ю. Сыромятников
ФГБОУ ВО «Воронежский государственный университет инженерных технологий»; ФГБОУ ВО «Воронежский государственный университет»
Россия

Сыромятников Михаил Юрьевич, к.б.н.

Scopus Author ID: 55829859000.

394036 Воронеж, проспект Революции, д. 19

394018 Воронеж, Университетская площадь, д. 1



Дополнительные файлы

1. Приложение
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (1MB)    
Метаданные ▾

Что уже известно об этой теме?

► В отличие от микробиома кишечника, который у пациенток с ожирением хорошо изучен, микробиом женского репродуктивного тракта находится в стадии изучения.

► Нормальным микробиомом нижних отделов женского репродуктивного тракта и эндометрия считается микробиом с доминированием лактобактерий.

► Снижение лактобактерий во всех нишах женских половых путей является фактором риска развития бесплодия, неудач имплантации, невынашивания беременности, преждевременных родов, эндометриоза и рака эндометрия.

Что нового дает статья?

► В статье обобщены данные об особенностях микробиома наружных половых органов, влагалища, цервикального канала, матки и яичников. Впервые выполнен обзор исследований микробиома всех указанных ниш у пациенток с избыточной массой тела и ожирением вне и во время беременности.

Как это может повлиять на клиническую практику в обозримом будущем?

► Избыточная масса тела и ожирение способствуют возникновению бактериального вагиноза за счет снижения количества лактобактерий и увеличения pH.

► Снижение массы тела является независимым фактором, способствующим восстановлению нормального количества лактобактерий.

Рецензия

Для цитирования:


Лебедева О.П., Беляева Н.О., Иванникова Д.С., Алтухова О.Б., Грязнова М.В., Корнеева О.С., Сыромятников М.Ю. Микробиом женского репродуктивного тракта и ожирение. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2024;18(6):847-857. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2024.555

For citation:


Lebedeva O.P., Belyaeva N.O., Ivannikova D.S., Altukhova O.B., Gryaznova M.V., Korneeva O.S., Syromyatnikov M.Yu. The female reproductive tract microbiome and obesity. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2024;18(6):847-857. (In Russ.) https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2024.555

Просмотров: 900


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.


ISSN 2313-7347 (Print)
ISSN 2500-3194 (Online)