Preview

Акушерство, Гинекология и Репродукция

Расширенный поиск

Иммуносупрессивная роль TIGIT в опухолях женской репродуктивной системы: от механизма к терапии

https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.647

Аннотация

Введение. Злокачественные новообразования женской репродуктивной системы – рак яичников, эндометрия и шейки матки занимают значительное место в структуре онкологической заболеваемости и смертности у женщин. Стандартные методы лечения, включая хирургическое вмешательство, химио- и лучевую терапию, имеют ограниченную эффективность при рецидивирующих и лекарственно устойчивых формах опухолей. Развитие иммунотерапии, в частности, ингибиторов иммунных контрольных точек (англ. immune checkpoint inhibitors, ICI), открыло новые терапевтические возможности, однако их клиническая эффективность в онкогинекологии остается недостаточной. В связи с этим возрастает интерес к новым мишеням, среди которых выделяется Т-клеточный иммуноглобулин и домен, содержащий ингибирующий мотив на основе тирозина (англ. T-cell immunoglobulin and ITIM domain, TIGIT), коингибирующий рецептор, экспрессируемый на T- и NK-клетках (англ. natural killer cells; естественные киллеры) и играющий важную роль в формировании иммуносупрессивного опухолевого микроокружения.

Цель: систематизировать современные данные о биологической функции TIGIT и его лигандов, участии в иммуносупрессии при злокачественных опухолях женской репродуктивной системы, а также оценить терапевтический потенциал его блокады в рамках персонализированной иммунотерапии.

Материалы и методы. Обзор подготовлен по методологии PRISMA. Проведен систематический поиск публикаций за 2013–2024 гг. в базах PubMed/MEDLINE, Scopus, Web of Science, Embase, Google Scholar и ClinicalTrials.gov. Включены 91 научный источник и 7 зарегистрированных клинических исследований. Оценивались оригинальные статьи, метаанализы, обзоры, руководства и отчеты по клиническим испытаниям.

Результаты. TIGIT взаимодействует с рядом лигандов (CD155, CD112, Nectin-4, Fap2), что приводит к подавлению активности NK-клеток и CD8+ Т-клеток, поляризации макрофагов в M2-фенотип, активации регуляторных T-клеток (англ. regulatory T cells, Treg) и нарушению антигенпрезентации. TIGIT коэкспрессируется с белком программируемой клеточной гибели 1 (англ. programmed cell death protein 1, PD-1) и CD96, формируя иммуносупрессивную сигнальную сеть. Повышенная экспрессия TIGIT ассоциирована с прогрессированием рака яичников, эндометрия и шейки матки, сниженной цитотоксичностью опухоль-инфильтрирующих лимфоцитов (англ. tumor-infiltrating lymphocytes, TIL) и неблагоприятным прогнозом. Блокада TIGIT, особенно в комбинации с PD-1/PD-L1 (англ. programmed cell death ligand 1; лиганд программируемой клеточной гибели 1), восстанавливает активность эффекторных клеток и усиливает иммунный ответ в доклинических и клинических исследованиях.

Заключение. TIGIT является перспективной иммунотерапевтической мишенью при злокачественных опухолях женской репродуктивной системы. Его блокада может повысить эффективность лечения у пациенток с рецидивирующими и резистентными опухолями. Комбинированные схемы с использованием анти-TIGIT препаратов требуют дальнейшей клинической валидации, но уже сегодня открывают новые направления в таргетной терапии и персонализированном подходе в онкогинекологии.

Об авторах

А. У. Хамадьянова
ФГБОУ ВО «Башкирский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Хамадьянова Аида Ульфатовна, к.м.н.

450008 Уфа, ул. Ленина, д. 3



А. И. Романова
ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Романова Александра Игоревна

127006 Москва, Долгоруковская ул., д. 4



А. Н. Скляр
ФГБОУ ВО «Ивановский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Скляр Александр Николаевич

153012 Иваново, Шереметевский проспект, д. 8



А. П. Ямилова
ФГБОУ ВО «Уральский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Ямилова Аделина Петровна

620028 Екатеринбург, ул. Репина, д. 3



М. Г. Миранда Планас
ГБУ ДНР «Центр первичной медико-санитарной помощи» № 3 г. Мариуполя
Россия

Миранда Планас Марина Геннадиевна

287501, Донецкая народная республика, Мариуполь, проспект Ленина, д. 80



Г. Д. Галеева
ФГБОУ ВО «Башкирский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Галеева Гузель Димовна

450008 Уфа, ул. Ленина, д. 3



С. Р. Хакимов
ФГБОУ ВО «Башкирский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Хакимов Салават Рафаилович

450008 Уфа, ул. Ленина, д. 3

 



А. А. Якубов
Таджикский государственный медицинский университет имени Абуали ибни Сино
Таджикистан

Якубов Абдуманон Абдулмуминович

734003 Душанбе, проспект Рудаки, д. 139



С. К. Бикиняев
ГБУЗ ТО «Областная клиническая больница № 2»
Россия

Бикиняев Салават Калбаевич

625039 Тюмень, ул. Мельникайте, д. 75



Ш. М. Маммаев
ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Маммаев Шапаудин Магомедович

344022 Ростов-на-Дону, Нахичеванский пер., 29



А. А. Варданян
ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Варданян Анастасия Андреевна

344022 Ростов-на-Дону, Нахичеванский пер., 29



П. А. Кантаева
ФГБОУ ВО «Чеченский государственный университет имени А.А. Кадырова»
Россия

Кантаева Петимат Ахмедовна

364034 Грозный, ул. А. Шерипова, д. 32



Т. Р. Алгириева
ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов имени Патриса Лумумбы»
Россия

Алгириева Танзила Ризвановна

117198 Москва, ул. Миклухо-Маклая, д. 6



Список литературы

1. Чернобровкина А.Е. Заболеваемость злокачественными новообразованиями женской половой сферы населения Санкт-Петербурга. Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО. 2022;30(1):29–35. https://doi.org/10.35627/2219-5238/2022-30-1-29-35.

2. Sung H., Ferlay J., Siegel R.L.et al. Global Cancer Statistics 2020: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer J Clin. 2021;71(3):209–49. https://doi.org/10.3322/caac.21660.

3. Song Y., Zhang Y. Research progress of neoantigens in gynecologic cancers. Int Immunopharmacol. 2022;112:109236. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2022.109236.

4. Peng H., He X., Wang Q. Immune checkpoint blockades in gynecological cancers: a review of clinical trials. Acta Obstet Gynecol Scand. 2022;101(9):941–51. https://doi.org/10.1111/aogs.14412.

5. Шубникова Е.В., Букатина Т.М., Вельц Н.Ю.и др. Ингибиторы контрольных точек иммунного ответа: новые риски нового класса противоопухолевых средств. Безопасность и риск фармакотерапии. 2020;8(1):9–22. https://doi.org/10.30895/2312-7821-2020-8-1-9-22.

6. Гаптулбарова К.А., Цыганов М.М., Ибрагимова М.К. и др. Эффективность иммунотерапии при разных злокачественных новообразованиях: обзор литературы. Успехи молекулярной онкологии. 2021;8(4):8–20. https://doi.org/10.17650/2313-805X-2021-8-4-8-20.

7. Petitprez F., Meylan M., de Reyniès A. et al. The tumor microenvironment in the response to immune checkpoint blockade therapies. Front Immunol. 2020;11:784. https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.00784.

8. Drakes M.L., Czerlanis C.M., Stiff P.J. Immune ccheckpoint blockade in gynecologic cancers: state of affairs. Cancers (Basel). 2020;12(11):3301. https://doi.org/10.3390/cancers12113301.

9. Мустафина Д.А., Багаутдинова А.Н., Зинатуллина М.М. и др. Роль ингибиторов иммунных контрольных точек в развитии и лечении инфекционных процессов. Клиническая практика. 2024;15(1):91–106. https://doi.org/10.17816/clinpract627504.

10. Chauvin J.M., Zarour H.M. TIGIT in cancer immunotherapy. J Immunother Cancer. 2020;8(2):e000957. https://doi.org/10.1136/jitc-2020-000957.

11. Tang W., Chen J., Ji T., Cong X. TIGIT, a novel immune checkpoint therapy for melanoma. Cell Death Dis. 2023;14(7):466. https://doi.org/10.1038/s41419-023-05961-3.

12. Yu X., Harden K., Gonzalez L.C. et al. The surface protein TIGIT suppresses T cell activation by promoting the generation of mature immunoregulatory dendritic cells. Nat Immunol. 2009;10(1):48–57. https://doi.org/10.1038/ni.1674.

13. Chiang E.Y., Mellman I. TIGIT-CD226-PVR axis: advancing immune checkpoint blockade for cancer immunotherapy. J Immunother Cancer. 2022;10(4):e004711. https://doi.org/10.1136/jitc-2022-004711.

14. Stengel K.F., Harden-Bowles K., Yu X. et al. Structure of TIGIT immunoreceptor bound to poliovirus receptor reveals a cell-cell adhesion and signaling mechanism that requires cis-trans receptor clustering. Proc Natl Acad Sci U S A. 2012;109(14):5399–404. https://doi.org/10.1073/pnas.1120606109.

15. Manieri N.A., Chiang E.Y., Grogan J.L. TIGIT: a key inhibitor of the cancer immunity cycle. Trends Immunol. 2017;38(1):20–8. https://doi.org/10.1016/j.it.2016.10.002.

16. Reches A., Ophir Y., Stein N. et al. Nectin4 is a novel TIGIT ligand which combines checkpoint inhibition and tumor specificity. J Immunother Cancer. 2020;8(1):e000266. https://doi.org/10.1136/jitc-2019-000266.

17. Gur C., Ibrahim Y., Isaacson B. et al. Binding of the Fap2 protein of Fusobacterium nucleatum to human inhibitory receptor TIGIT protects tumors from immune cell attack. Immunity. 2015;42(2):344–55. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2015.01.010.

18. Zhou R., Chen S., Wu Q. et al. CD155 and its receptors in cancer immune escape and immunotherapy. Cancer Lett. 2023;573:216381. https://doi.org/10.1016/j.canlet.2023.216381.

19. Jin H.S., Park Y. Hitting the complexity of the TIGIT-CD96-CD112R-CD226 axis for next-generation cancer immunotherapy. BMB Rep. 2021;54(1):2–11. https://doi.org/10.5483/BMBRep.2021.54.1.229.

20. Zeng T., Cao Y., Jin T. et al. The CD112R/CD112 axis: a breakthrough in cancer immunotherapy. J Exp Clin Cancer Res. 2021;40(1):285. https://doi.org/10.1186/s13046-021-02053-y.

21. Son Y., Lee B., Choi Y.J. et al. Nectin-2 (CD112) is expressed on outgrowth endothelial cells and regulates cell proliferation and angiogenic function. PLoS One. 2016;11(9):e0163301. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0163301.

22. Deuss F.A., Gully B.S., Rossjohn J., Berry R. Recognition of nectin-2 by the natural killer cell receptor T cell immunoglobulin and ITIM domain (TIGIT). J Biol Chem. 2017;292(27):11413–22. https://doi.org/10.1074/jbc.M117.786483.

23. Wu B., Zhong C., Lang Q. et al. Poliovirus receptor (PVR)-like protein cosignaling network: new opportunities for cancer immunotherapy. J Exp Clin Cancer Res. 2021;40(1):267. https://doi.org/10.1186/s13046-021-02068-5.

24. Yue C., Gao S., Li S. et al. TIGIT as a promising therapeutic target in autoimmune diseases. Front Immunol. 2022;13:911919. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.911919.

25. Bouleftour W., Guillot A., Magne N. The anti-nectin 4: a promising tumor cells target. A systematic review. Mol Cancer Ther. 2022;21(4):493–501. https://doi.org/10.1158/1535-7163.MCT-21-0846.

26. Braun M., Aguilera A.R., Sundarrajan A. et al. CD155 on tumor cells drives resistance to immunotherapy by Inducing the degradation of the activating receptor CD226 in CD8+ T cells. Immunity. 2020;53(4):805–823.e15. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2020.09.010.

27. Viot J., Abdeljaoued S., Vienot A. et al. CD8+ CD226high T cells in liver metastases dictate the prognosis of colorectal cancer patients treated with chemotherapy and radical surgery. Cell Mol Immunol. 2023;20(4):365–78. https://doi.org/10.1038/s41423-023-00978-2.

28. Weulersse M., Asrir A., Pichler A.C. et al. Eomes-dependent loss of the co-activating receptor CD226 restrains CD8+ T cell aAnti-tumor functions and limits the efficacy of cancer immunotherapy. Immunity. 2020;53(4):824-839.e10. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2020.09.006.

29. Shibuya A., Shibuya K. DNAM-1 versus TIGIT: competitive roles in tumor immunity and inflammatory responses. Int Immunol. 2021;33(12):687–92. https://doi.org/10.1093/intimm/dxab085.

30. Stanietsky N., Simic H., Arapovic J. et al. The interaction of TIGIT with PVR and PVRL2 inhibits human NK cell cytotoxicity. Proc Natl Acad Sci U S A. 2009;106(42):17858–63. https://doi.org/10.1073/pnas.0903474106.

31. Johnston R.J., Comps-Agrar L., Hackney J. et al. The immunoreceptor TIGIT regulates antitumor and antiviral CD8(+) T cell effector function. Cancer Cell. 2014;26(6):923–37. https://doi.org/10.1016/j.ccell.2014.10.018.

32. Banta K.L., Xu X., Chitre A.S. et al. Mechanistic convergence of the TIGIT and PD-1 inhibitory pathways necessitates co-blockade to optimize anti-tumor CD8+ T cell responses. Immunity. 2022;55(3):512–26. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2022.02.005.

33. Feng S, Isayev O, Werner J, Bazhin AV. CD96 as a potential immune regulator in cancers. Int J Mol Sci. 2023;24(2):1303. https://doi.org/10.3390/ijms24021303.

34. Georgiev H., Ravens I., Papadogianni G., Bernhardt G. Coming of age: CD96 emerges as modulator of immune responses. Front Immunol. 2018;9:1072. https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.01072.

35. Chiang E.Y., de Almeida P.E., de Almeida Nagata D.E. et al. CD96 functions as a co-stimulatory receptor to enhance CD8+ T cell activation and effector responses. Eur J Immunol. 2020;50(6):891–902. https://doi.org/10.1002/eji.201948405.

36. Zhu Y., Paniccia A., Schulick A.C. et al. Identification of CD112R as a novel checkpoint for human T cells. J Exp Med. 2016;213(2):167–76. https://doi.org/10.1084/jem.20150785.

37. Whelan S., Ophir E., Kotturi M.F. et al. PVRIG and PVRL2 are induced in cancer and inhibit CD8+ T-cell function. Cancer Immunol Res. 2019;7(2):257–68. https://doi.org/10.1158/2326-6066.CIR-18-0442.

38. Chu X., Tian W., Wang Z. et al. Correction: co-inhibition of TIGIT and PD-1/PD-L1 in cancer immunotherapy: mechanisms and clinical trials. Mol Cancer. 2023;22(1):101. https://doi.org/10.1186/s12943-023-01812-z.

39. Paijens S.T., Vledder A., de Bruyn M., Nijman H.W. Tumor-infiltrating lymphocytes in the immunotherapy era. Cell Mol Immunol. 2021;18(4):842–59. https://doi.org/10.1038/s41423-020-00565-9.

40. Liu S., Zhang H., Li M. et al. Recruitment of Grb2 and SHIP1 by the ITT-like motif of TIGIT suppresses granule polarization and cytotoxicity of NK cells. Cell Death Differ. 2013;20(3):456–64. https://doi.org/10.1038/cdd.2012.141.

41. Li M., Xia P., Du Y. et al. T-cell immunoglobulin and ITIM domain (TIGIT) receptor/poliovirus receptor (PVR) ligand engagement suppresses interferon-γ production of natural killer cells via β-arrestin 2-mediated negative signaling. J Biol Chem. 2014;289(25):17647–57. https://doi.org/10.1074/jbc.M114.572420.

42. Kumar S. Natural killer cell cytotoxicity and its regulation by inhibitory receptors. Immunology. 2018;154(3):383–93. https://doi.org/10.1111/imm.12921.

43. Joller N., Hafler J.P., Brynedal B. et al. Cutting edge: TIGIT has T cell-intrinsic inhibitory functions. J Immunol. 2011;186(3):1338–42. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1003081.

44. He W., Zhang H., Han F. et al. CD155T/TIGIT signaling regulates CD8+ T-cell metabolism and promotes tumor progression in human gastric cancer. Cancer Res. 2017;77(22):6375–88. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-17-0381.

45. Li J., Zhou J., Huang H. et al. Mature dendritic cells enriched in immunoregulatory molecules (mregDCs): aA novel population in the tumour microenvironment and immunotherapy target. Clin Transl Med. 2023;13(2):e1199. https://doi.org/10.1002/ctm2.1199.

46. Saraiva M., Vieira P., O'Garra A. Biology and therapeutic potential of interleukin-10. J Exp Med. 2020;217(1):e20190418. https://doi.org/10.1084/jem.20190418.

47. Lucca L.E., Dominguez-Villar M. Modulation of regulatory T cell function and stability by co-inhibitory receptors. Nat Rev Immunol. 2020;20(11):680–93. https://doi.org/10.1038/s41577-020-0296-3.

48. Cortez J.T., Montauti E., Shifrut E. et al. CRISPR screen in regulatory T cells reveals modulators of Foxp3. Nature. 2020;582(7812):416–20. https://doi.org/10.1038/s41586-020-2246-4.

49. Zhang Y., Maksimovic J., Naselli G. et al. Genome-wide DNA methylation analysis identifies hypomethylated genes regulated by FOXP3 in human regulatory T cells. Blood. 2013;122(16):2823–36. https://doi.org/10.1182/blood-2013-02-481788.

50. Joller N., Lozano E., Burkett P.R. et al. Treg cells expressing the coinhibitory molecule TIGIT selectively inhibit proinflammatory Th1 and Th17 cell responses. Immunity. 2014;40(4):569–81. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2014.02.012.

51. Lucca L.E., Axisa P.P., Singer E.R. et al. TIGIT signaling restores suppressor function of Th1 Tregs. JCI Insight. 2019;4(3):e124427. https://doi.org/10.1172/jci.insight.124427.

52. Preillon J., Cuende J., Rabolli V. et al. Restoration of T-cell effector function, depletion of Tregs, and direct killing of tumor cells: the multiple mechanisms of action of a-TIGIT antagonist antibodies. Mol Cancer Ther. 2021;20(1):121–31. https://doi.org/10.1158/1535-7163.MCT-20-0464.

53. Jayasingam S.D., Citartan M., Thang T.H. et al. Evaluating the polarization of tumor-associated macrophages into M1 and M2 phenotypes in human cancer tissue: technicalities and challenges in routine clinical practice. Front Oncol. 2020;9:1512. https://doi.org/10.3389/fonc.2019.01512.

54. Brauneck F., Fischer B., Witt M. et al. TIGIT blockade repolarizes AML-associated TIGIT+ M2 macrophages to an M1 phenotype and increases CD47-mediated phagocytosis. J Immunother Cancer. 2022;10(12):e004794. https://doi.org/10.1136/jitc-2022-004794.

55. Noguchi Y., Maeda A., Lo P.C. et al. Human TIGIT on porcine aortic endothelial cells suppresses xenogeneic macrophage-mediated cytotoxicity. Immunobiology. 2019;224(5):605–13. https://doi.org/10.1016/j.imbio.2019.07.008.

56. Mao L., Xiao Y., Yang Q.C. et al. TIGIT/CD155 blockade enhances anti-PD-L1 therapy in head and neck squamous cell carcinoma by targeting myeloid-derived suppressor cells. Oral Oncol. 2021;121:105472. https://doi.org/10.1016/j.oraloncology.2021.105472.

57. Sarhan D., Cichocki F., Zhang B. et al. Adaptive NK cells with low TIGIT expression are inherently resistant to myeloid-derived suppressor cells. Cancer Res. 2016;76(19):5696–706. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-16-0839.

58. Zou Y., Xu Y., Chen X., Zheng L. Advances in the application of immune checkpoint inhibitors in gynecological tumors. Int Immunopharmacol. 2023;117:109774. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2023.109774.

59. Sharma P., Goswami S., Raychaudhuri D. et al. Immune checkpoint therapy-current perspectives and future directions. Cell. 2023;186(8):1652–69. https://doi.org/10.1016/j.cell.2023.03.006.

60. Востров А.Н., Казакевич В.И., Митина Л.А. и др. Ошибки эхографии в диагностике распространенности рака яичников. Архив акушерства и гинекологии имени В.Ф. Снегирева. 2017;4(1):40–4. https://doi.org/10.18821/2313-8726-2017-4-1-40-44.

61. Lheureux S., Gourley C., Vergote I., Oza A.M. Epithelial ovarian cancer. Lancet. 2019;393(10177):1240–53. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(18)32552-2.

62. Pawłowska A., Skiba W., Suszczyk D. et al. The dual blockade of the TIGIT and PD-1/PD-L1 pathway as a new hope for ovarian cancer patients. Cancers (Basel). 2022;14(23):5757. https://doi.org/10.3390/cancers14235757.

63. Pawłowska A., Rekowska A., Kuryło W. et al. Current understanding on why ovarian cancer is resistant to immune checkpoint inhibitors. Int J Mol Sci. 2023;24(13):10859. https://doi.org/10.3390/ijms241310859.

64. Maas R.J., Hoogstad-van Evert J.S., Van der Meer J.M. et al. TIGIT blockade enhances functionality of peritoneal NK cells with altered expression of DNAM-1/TIGIT/CD96 checkpoint molecules in ovarian cancer. Oncoimmunology. 2020;9(1):1843247. https://doi.org/10.1080/2162402X.2020.1843247.

65. Maiorano B.A., Maiorano M.F.P., Lorusso D., Maiello E. Ovarian cancer in the era of immune checkpoint inhibitors: state of the art and future perspectives. Cancers (Basel). 2021;13(17):4438. https://doi.org/10.3390/cancers13174438.

66. Howitt B.E., Strickland K.C., Sholl L.M. et al. Clear cell ovarian cancers with microsatellite instability: A unique subset of ovarian cancers with increased tumor-infiltrating lymphocytes and PD-1/PD-L1 expression. Oncoimmunology. 2017;6(2):e1277308. https://doi.org/10.1080/2162402X.2016.1277308.

67. Yang B., Li X., Zhang W. et al. Spatial heterogeneity of infiltrating T cells in high-grade serous ovarian cancer revealed by multi-omics analysis. Cell Rep Med. 2022;3(12):100856. https://doi.org/10.1016/j.xcrm.2022.100856.

68. Chen F., Xu Y., Chen Y., Shan S. TIGIT enhances CD4+ regulatory T-cell response and mediates immune suppression in a murine ovarian cancer model. Cancer Med. 2020;9(10):3584–91. https://doi.org/10.1002/cam4.2976.

69. Xu J., Fang Y., Chen K. et al. Single-cell RNA sequencing reveals the tissue architecture in human high-grade serous ovarian cancer. Clin Cancer Res. 2022;28(16):3590–602. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-22-0296.

70. Smazynski J., Hamilton P.T., Thornton S. et al. The immune suppressive factors CD155 and PD-L1 show contrasting expression patterns and immune correlates in ovarian and other cancers. Gynecol Oncol. 2020;158(1):167–77. https://doi.org/10.1016/j.ygyno.2020.04.689.

71. Laumont C.M., Wouters M.C.A., Smazynski J. et al. Single-cell profiles and prognostic impact of tumor-infiltrating lymphocytes coexpressing CD39, CD103, and PD-1 in ovarian cancer. Clin Cancer Res. 2021;27(14):4089–100. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-20-4394.

72. Brenna E., Pedroza-Pacheco I. Harnessing CXCL13 in ovarian cancer. Nat Rev Immunol. 2022;22(3):145. https://doi.org/10.1038/s41577-022-00683-7.

73. Ozmadenci D., Shankara Narayanan J.S., Andrew J. et al. Tumor FAK orchestrates immunosuppression in ovarian cancer via the CD155/TIGIT axis. Proc Natl Acad Sci U S A. 2022;119(17):e2117065119. https://doi.org/10.1073/pnas.2117065119.

74. Кулиева Г.З., Мкртчян Л.С., Крикунова Л.И. и др. Эпидемиологические аспекты заболеваемости раком шейки матки и смертности от него (обзор литературы). Опухоли женской репродуктивной системы. 2023;19(3):77–84. https://doi.org/10.17650/1994-4098-2023-19-3-77-84.

75. Gennigens C., Jerusalem G., Lapaille L. et al. Recurrent or primary metastatic cervical cancer: current and future treatments. ESMO Open. 2022;7(5):100579. https://doi.org/10.1016/j.esmoop.2022.100579.

76. Пивазян Л.Г., Унанян А.Л., Давыдова Ю.Д. и др. Профилактика и скрининг рака шейки матки: обзор международных клинических рекомендаций. Проблемы репродукции. 2022;28(5):90–9.

77. Liu Y., Wu L., Tong R. et al. PD-1/PD-L1 inhibitors in cervical cancer. Front Pharmacol. 2019;10:65. https://doi.org/10.3389/fphar.2019.00065.

78. Feng Y.C., Ji W.L., Yue N. et al. The relationship between the PD-1/PD-L1 pathway and DNA mismatch repair in cervical cancer and its clinical significance. Cancer Manag Res. 2018;10:105–13. https://doi.org/10.2147/CMAR.S152232.

79. Li C., Cang W., Gu Y. et al. The anti-PD-1 era of cervical cancer: achievement, opportunity, and challenge. Front Immunol. 2023;14:1195476. https://doi.org/10.3389/fimmu.2023.1195476.

80. Liu L., Wang A., Liu X. et al. Blocking TIGIT/CD155 signalling reverses CD8+ T cell exhaustion and enhances the antitumor activity in cervical cancer. J Transl Med. 2022;20(1):280. https://doi.org/10.1186/s12967-022-03480.

81. Wang Y., Wang C., Qiu J. et al. Targeting CD96 overcomes PD-1 blockade resistance by enhancing CD8+ TIL function in cervical cancer. J Immunother Cancer. 2022;10(3):e003667. https://doi.org/10.1136/jitc-2021-003667.

82. Kalampokas E., Giannis G., Kalampokas T. et al. Current approaches to the management of patients with endometrial cancer. Cancers (Basel). 2022;14(18):4500. https://doi.org/10.3390/cancers14184500.

83. Jamieson A., Bosse T., McAlpine J.N. The emerging role of molecular pathology in directing the systemic treatment of endometrial cancer. Ther Adv Med Oncol. 2021;13:17588359211035959. https://doi.org/10.1177/17588359211035959.

84. Rizzo A. Immune checkpoint inhibitors and mismatch repair status in advanced endometrial cancer: elective affinities. J Clin Med. 2022;11(13):3912. https://doi.org/10.3390/jcm11133912.

85. Cancer Genome Atlas Research Network; Kandoth C., Schultz N. et al. Integrated genomic characterization of endometrial carcinoma. Nature. 2013;497(7447):67–73. https://doi.org/10.1038/nature12113.

86. Mullen M.M., Mutch D.G. Endometrial tumor immune response: predictive biomarker of response to immunotherapy. Clin Cancer Res. 2019;25(8):2366–8. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-18-4122.

87. Gargiulo P., Della Pepa C., Berardi S. et al. Tumor genotype and immune microenvironment in POLE-ultramutated and MSI-hypermutated endometrial cancers: nNew candidates for checkpoint blockade immunotherapy? Cancer Treat Rev. 2016;48:61–8. https://doi.org/10.1016/j.ctrv.2016.06.008.

88. Degos C., Heinemann M., Barrou J. et al. Endometrial tumor microenvironment alters human NK cell recruitment, and resident NK cell phenotype and function. Front Immunol. 2019;10:877. https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.00877.

89. Jiang F., Mao M., Jiang S. et al. PD-1 and TIGIT coexpressing CD8 + CD103 + tissue-resident memory cells in endometrial cancer as potential targets for immunotherapy. Int Immunopharmacol. 2024;127:111381. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2023.111381.

90. Kim T.W., Bedard P.L., LoRusso P. et al. Anti-TIGIT antibody tiragolumab alone or with atezolizumab in patients with advanced solid tumors: a phase 1a/1b nonrandomized controlled trial. JAMA Oncol. 2023;9(11):1574–82. https://doi.org/10.1001/jamaoncol.2023.3867.

91. Cho B.C., Abreu D.R., Hussein M. et al. Tiragolumab plus atezolizumab versus placebo plus atezolizumab as a first-line treatment for PD-L1-selected non-small-cell lung cancer (CITYSCAPE): primary and follow-up analyses of a randomised, double-blind, phase 2 study. Lancet Oncol. 2022;23(6):781–92. https://doi.org/10.1016/S1470-2045(22)00226-1.


Рецензия

Для цитирования:


Хамадьянова А.У., Романова А.И., Скляр А.Н., Ямилова А.П., Миранда Планас М.Г., Галеева Г.Д., Хакимов С.Р., Якубов А.А., Бикиняев С.К., Маммаев Ш.М., Варданян А.А., Кантаева П.А., Алгириева Т.Р. Иммуносупрессивная роль TIGIT в опухолях женской репродуктивной системы: от механизма к терапии. Акушерство, Гинекология и Репродукция. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.647

For citation:


Khamadyanova A.U., Romanova A.I., Sklyar A.N., Yamilova A.P., Miranda Planas M.G., Galeeva G.D., Khakimov S.R., Yakubov A.A., Bikinyaev S.K., Mammaev Sh.M., Vardanyan A.A., Kantaeva P.A., Algirieva T.R. TIGIT immunosuppressive role in female reproductive system malignant neoplasms: from mechanism to therapy. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. (In Russ.) https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.647

Просмотров: 102


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.


ISSN 2313-7347 (Print)
ISSN 2500-3194 (Online)