Перейти к:
Антифосфолипидные антитела как потенциальный фактор прогрессии опухоли
https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2024.473
Аннотация
Введение. Современные общепринятые клинико-лабораторные критерии антифосфолипидного синдрома (АФС) хорошо известны и включают сосудистый тромбоз и осложнения беременности у пациентов с циркуляцией антифосфолипидных антител (АФА). Однако в последние нескольких лет АФА стали частой находкой у больных злокачественными новообразованиями. Накапливающиеся данные указывают на убедительные доказательства этой ассоциации и позволяют предположить, что, возможно, тромбозы у онкобольных могут быть связаны с действием АФА. По данным мировой литературы, циркуляция АФА у онкологических больных варьирует от 15 до 74 %, что может быть обусловлено различиями в клинических характеристиках включенных в исследование онкологических больных, а также различной интерпретацией тестов по АФА диагностике.
Цель: определение профиля АФА у больных со злокачественными новообразованиями женской репродуктивной системы, выявление ассоциации АФА с тромбозами, степенью прогрессирования заболевания и исходом.
Материалы и методы. Проведено одноцентровое наблюдательное исследование с участием 130 женщин, из которых основную группу составили 70 пациенток с онкогинекологическими заболеваниями (аденокарциномой тела матки, шейки матки и яичников). Контрольную группу составили 60 практически здоровых женщин без тромботических осложнений, соответствующих по возрасту основной группе. Все участницы исследования были обследованы на наличие циркуляции волчаночного антикоагулянта, а также изотипов IgG, IgM антител к кардиолипину (англ. anti-cardiolipin antibodies, aCLs), β2-гликопротеину 1 (англ. anti-β2-glycoprotein 1 antibodies, anti-β2-GР1), аннексину V, фосфатидилсерин-протромбиновому комплексу (англ. anti-phosphatidylserine-prothrombin complex antibodies, anti-PS-PT) иммуноферментным методом.
Результаты. Умеренные или низкие титры АФА присутствуют у 34,2 % пациентов с раком тела матки, яичников и шейки матки. У 10 (14,2 %) из 70 женщин основной группы были тромбозы, и лишь у 5 из 10 женщин с тромбозами были обнаружены АФА. Не было выявлено статистически значимых различий между пациентками с тромбозами и без тромботических осложнений у женщин с онкогинекологическим раком. Также исследованные параметры не повлияли на безрецидивную выживаемость больных с онкологическими заболеваниями. При этом была обнаружена статистически значимая взаимосвязь между циркуляцией антител к кардиолипину (IgG, IgM) и антител к PS-PT (IgG, IgM) и степенью онкологического процесса. Кроме того, была выявлена значимая связь уровня антител к кардиолипину изотипа IgM (p = 0,017) с рецидивом заболевания.
Заключение. Хотя тромбозы и являются визитной карточкой АФС, помимо острого тромбоза, пациенты с АФС имеют другие нетромботические проявления, одним из которых является влияние на инвазию и прогрессирование роста опухоли.
Ключевые слова
Для цитирования:
Асланова З.Д., Хизроева Д.Х., Солопова А.Г., Бицадзе В.О., Воробьев А.В., Гри Ж., Элалами И., Макацария Н.А., Заболотная Д.Ю. Антифосфолипидные антитела как потенциальный фактор прогрессии опухоли. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2024;18(1):8-22. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2024.473
For citation:
Aslanova Z.D., Khizroeva J.Kh., Solopova A.G., Bitsadze V.O., Vorobev A.V., Gris J., Elalamy I., Makatsariya N.A., Zabolotnaya D.Yu. Antiphospholipid antibodies as a potential factor of tumor progression. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2024;18(1):8-22. (In Russ.) https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2024.473
Введение / Introduction
Современные общепринятые клинико-лабораторные критерии антифосфолипидного синдрома (AФС) хорошо известны и включают сосудистый тромбоз и осложнения беременности у пациентов с циркуляцией антифосфолипидных антител (АФА) – волчаночного антикоагулянта (ВА), высокие титры антител к кардиолипину (англ. anti-cardiolipin antibodies, aCL) и β2-гликопротеину 1 (англ. anti-β2-glycoprotein 1 antibodies, anti-β2-GР1). Сосудистый тромбоз может быть артериальным, венозным или сосудов мелкого калибра в любых тканях или органах и должен быть объективно подтвержден визуализацией или гистопатологией. Заболевания сердечных клапанов, сетчатое ливедо, тромбоцитопения и нефропатия являются некритериальными клиническими проявлениями АФС, которые могут проявляться изолированно или в сочетании с тромбозом и/или заболеваемостью во время беременности. Рецепторы АФА в большом количестве находятся во многих органах и тканях, что обуславливает такую разнообразную клиническую картину АФС.
Хотя АФА в первую очередь связаны с АФС, они не являются специфичными исключительно для AФС; циркуляцию АФА можно найти у здоровых людей, у пациентов с другими аутоиммунными заболеваниями, с инфарктом миокарда, инсультом, мигренями. В последние нескольких лет стали говорить и о взаимосвязи АФА и рака: повышенные уровни и высокая распространенность АФА были обнаружены при различных злокачественных новообразованиях [1].
По данным мировой литературы, циркуляция АФА у онкологических больных варьирует от 15 до 74 %. Такой значительный разброс обусловлен отчасти различиями в дизайне исследований и непоследовательными определениями «АФА-позитивности» [2][3]. Кроме того, различия в распространенности АФА в популяции онкологических больных могут быть обусловлены различиями в клинических характеристиках включенных в исследование онкологических пациентов. Например, проспективное исследование недавно диагностированных амбулаторных больных раком, получающих химиотерапию, продемонстрировало, что АФА встречались у 18,7 % онкологических больных, стойкая циркуляция АФА через 12 нед сохранялась у 14,6 %. При этом наличие АФА в 3,6 раз повышало риск артериальных и венозных тромбозов у амбулаторных онкологических пациентов [4]. Однако исследование тяжелых онкобольных, находившихся более 48 ч в отделении интенсивной терапии, показало, что частота циркуляции АФА составила 74 % [5].
Точные механизмы, ответственные за продукцию АФА у больных раком, еще полностью не изучены, однако было предложено несколько гипотез, объясняющих у них наличие АФА [6]:
1) выработка аутоантител иммунной системой в ответ на опухолевые антигены. Опухолевые клетки могут продуцировать измененные или мутировавшие белки (неоантигены), которые иммунная система распознает как чужеродные. В отличие от ассоциированных с опухолью антигенов, которые в избытке экспрессируются раковыми клетками и могут присутствовать в нормальных тканях, неоантигены являются исключительно опухолеспецифичными, не кодируются зародышевой линией и распознаются адаптивной иммунной системой как чужеродные эпитопы. Открытие неоантигенов опухоли и определение их приоритетности является неотъемлемой частью продвижения следующего поколения методов иммунотерапии рака. Некоторые исследования предполагают, что эти опухолевые неоантигены могут иметь сходство с фосфолипидсвязывающими белками, приводя к образованию АФА [7][8];
2) секреция АФА непосредственно опухолевыми клетками; нарушение регуляции иммунного ответа. Рак может нарушить хрупкий баланс иммунной системы, приводя к выработке антител против собственных антигенов, таких как фосфолипиды [9]. Это нарушение регуляции может быть результатом хронического воспаления, иммунной дисфункции или вызванных опухолью изменений активности иммунных клеток;
3) распространение или перемещение эпитопа, когда иммунная система меняет направление на другие эпитопы, отличные от первичного. В некоторых случаях антигены, ассоциированные с раком, могут вызывать иммунный ответ против нормальных антигенов. Это явление, известное как распространение эпитопа, может привести к выработке антител против фосфолипидсвязывающих белков.
Как известно, АФА проявляют различную биологическую активность. Многочисленные экспериментальные модели рака молочной железы (РМЖ) in vivo продемонстрировали, что введение IgG АФА, полученные у пациентов с аутоиммунным заболеванием, быстро ускоряет ангиогенез опухоли и последующую прогрессию опухоли, особенно при медленно растущих бессосудистых опухолях. Действие АФА было локальным по отношению к участку опухоли и вызывало лейкоцитарную инфильтрацию и инвазию опухоли. Опухолевые клетки, обработанные АФА-положительным IgG, экспрессировали множество проангиогенных генов, включая фактор роста эндотелия сосудов (англ. vascular endothelial growth factor, VEGF) [10], тканевой фактор (англ. tissue factor, TF) и колониестимулирующий фактор 1 (англ. colony stimulating factor 1, CSF1) [11]. Повышая проницаемость сосудов, аутоантитела к антифосфолипидам способны увеличивать утечку протонов через внутреннюю мембрану митохондрий и снижать способность АТФ-азы продуцировать АТФ, приводя к некрозу [12]. В митохондриях электроны, проходящие через систему переноса электронов, перемещают протоны через внутреннюю мембрану митохондрий и тем самым создают электрохимический градиент, который используется для синтеза АТФ [9]. Неизбежно происходит некоторая утечка электронов, и их последующая реакция с кислородом приводит к образованию реактивных форм кислорода (англ. reactive oxygen species, ROS) в виде супероксида (O2−) [13]. АФА взаимодействуют с митохондриями, индуцируя выработку оксида азота (NO) и ROS, способствуя окислительному стрессу и, в конечном счете, образованию опасных внеклеточных везикул (англ. extracellular vesicles, EVs) [14].
Ранее EVs рассматривали как «мешки для мусора» для удаления клеточных компонентов. Они легко обнаруживаются в различных жидкостях организма, включая кровь, мочу и слюну, и могут служить отличным биомаркером для мониторинга возникновения, прогрессирования и прогноза рака, а также для прогнозирования эффективности схем лечения. EVs способствуют различным стадиям метастазирования рака, таким как стимулирование ангиогенеза, модуляция иммунной системы и формирование преметастатической ниши [15][16]. Исследования in vitro демонстрируют значительное повышение уровня эндотелиальных EVs после стимуляции эндотелиальных клеток антифосфолипидными антителами [14].
Многие опухолевые клетки продуцируют TF, который является центральным фактором каскада свертывания и может стимулировать ангиогенез либо посредством прокоагулянтной функции и активации тромбоцитов, либо альтернативно, путем прямой активации активируемого протеазой рецептора-2 (англ. protease-activated receptor-2, PAR2) и проангиогенной передачи сигналов в эндотелиальных клетках [17]. Экспериментальные модели на животных показали, что АФА обладают потенциальными проонкогенными свойствами, которые опосредуются тканевым фактором. АФА активируют экспрессию проангиогенных генов в клетках опухоли, индуцируют TF-зависимую васкуляризацию в небольших, медленно растущих бессосудистых опухолях и способствуют прогрессированию опухоли на нескольких мышиных моделях РМЖ; т. е. TF, полученный из опухолевых клеток, в присутствии АФА способствовал быстрому прогрессированию опухоли по сравнению с образцами без присутствия АФА [11].
Помимо влияния на стимуляцию ангиогенеза и прогрессирование опухоли, TF является мощным прокоагулянтом, повышающим риск тромбоэмболических осложнений (ТЭО) у больных раком [17]. Тромбоз является одним из самых грозных осложнений онкологического процесса и занимает второе место среди всех причин летальных исходов [18]. TF, продуцируемый злокачественными клетками, по-видимому, запускает каскад свертывания, приводящий к образованию фактора Ха (FXa), в то время как некоторые раковые клетки могут продуцировать противораковый прокоагулянт, который действует непосредственно на FXa.
В дополнение к потенциальному прокоагулянтному эффекту раковых клеток, некоторые виды противоопухолевой терапии могут быть дополнительной причиной рак-ассоциированного тромбоза. Было обнаружено, что различные химиотерапевтические препараты, включая метотрексат, циклофосфамид, цисплатин, доксорубицин, 5-фторурацил и леналидомид, связаны с шестикратным повышенным риском венозных тромбоэмболических осложнений (ВТЭО) и значительно повышают риск смертности [19]. Другие причины включают общую реакцию организма на опухоль, использование центральных венозных катетеров, венозный застой из-за сдавления кровеносных сосудов опухолью и длительную иммобилизацию онкологических больных в критическом состоянии [20]. Наличие же АФА может усиливать этот риск или может быть одной из причин тромбозов, ассоциированных с опухолью [21].
Кроме того, злокачественные новообразования могут являться причиной неспровоцированного тромбоза. Почти у 10 % пациентов с идиопатическим тромбозом в течение следующих 5–10 лет после первоначального диагноза тромбоза могут быть диагностированы онкологические заболевания. Эта ассоциация хорошо известна еще со времен Армана Труссо, который в 1865 г. описал наличие мигрирующих тромбофлебитов у опухолевых пациентов [22][23].
Некоторые авторы отмечают, что онкологические пациенты с повышенным титром АФА, в основном с высокими титрами, больше подвержены ТЭО [24]. Высокие титры либо IgG, либо IgM изотипов были обнаружены у 10 из 13 АФА-позитивных онкологических больных с ТЭО по сравнению с 2 из 34 АФА-положительных онкологических пациентов без ТЭО (р < 0,0001) [25].
Цель: определение профиля АФА у больных со злокачественными новообразованиями женской репродуктивной системы, выявление ассоциации АФА с тромбозами, степенью прогрессирования заболевания и исходом.
Материалы и методы / Materials and methods
Дизайн исследования / Study design
Проведено одноцентровое наблюдательное исследование с участием 130 женщин, из которых основную группу составили 70 пациенток с онкогинекологическими заболеваниями. Контрольную группу составили 60 практически здоровых женщин. Сбор клинического материала проводился с 2021 г. по 2023 г. на базе ФГБУ «Российский научный центр рентгенорадиологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации. Средний возраст всей когорты обследованных женщин составил 56,0 [ 47,0; 63,0] лет. У всех пациентов основной группы при гистологическом исследовании выявлена аденокарцинома.
Критерии включения и исключения / Inclusion and exclusion criteria
Критерии включения в основную группу: возраст от 18 до 75 лет; подтвержденный диагноз аденокарциномы шейки, тела матки и аденокарциномы яичников по данным клинико-лабораторных, инструментальных и морфологических исследований; пациенты с тромботическими осложнениями в анамнезе; комплаентность и подписанное информированное согласие на участие в исследовании.
Критерии исключения из основной группы: молодой (младше 18 лет) или пожилой (старше 75 лет) возраст; другие типы онкогинекологического рака; тяжелая сопутствующая патология, которая может повлиять на результат исследования; психические заболевания; беременность; нежелание продолжать участвовать в исследовании.
Критерии включения в контрольную группу: практически здоровые женщины без диагностированного онкологического заболевания и без тромботического анамнеза в возрасте от 18 до 75 лет; подписанное информированное согласие на участие в исследовании.
Критерии исключения из контрольной группы: отказ от участия в исследовании.
Методы исследования / Study methods
На первом этапе проводился сбор анамнеза (онкологический, соматический, семейный, акушерско-гинекологический, тромботический). Поскольку большинство всех случаев рака эндометрия, рака шейки матки и яичников являются аденокарциномами, в исследование были включены женщины только с гистологически подтвержденным диагнозом аденокарциномы. Рутинное лабораторное исследование включало общий анализ крови, биохимическое исследование крови, показатели гемостаза – содержание фибриногена, протромбина и D-димера, протромбиновое время (ПВ), активированное частичное тромбопластиновое время (АЧТВ), международное нормализованное отношение (МНО), тромбиновое время. Материалом для исследования служили образцы плазмы, полученные в первый день госпитализации в ФГБУ РНЦРР Минздрава России (до начала терапии). Инструментальная диагностика включала компьютерную томографию (КТ) органов грудной клетки и брюшной полости, ультразвуковое исследование (УЗИ) органов малого таза, рентгенографию органов грудной клетки, магнитно-резонансную томографию (МРТ) органов малого таза. По данным КТ, рентгенографии и УЗИ оценивали степень распространенности онкологического процесса и анатомические особенности пациента, а результаты МРТ отражали степень метастазирования онкогинекологического заболевания. Оценку состояния сосудов и вен нижних конечностей с целью выявления тромбов, определение скорости кровотока и других характеристик осуществляли с помощью ультразвуковой доплерографии (УЗДГ) нижних конечностей.
В дальнейшем образцы плазмы всех участниц исследования были протестированы на наличие АФА. Диагностика АФА включала в себя определение изотипов IgG/IgM традиционных критериальных антител к кардиолипину и к β2-GР1, а также некритериальных антител к фосфатидилсерин-протромбиновому комплексу (англ. anti-phosphatidylserine-prothrombin complex antibodies, anti-PS-PT) и аннексину V. Определение АФА проводили иммуноферментным методом (ИФА) с помощью коммерческих наборов (Orgentec Diagnostica GmbH, Германия). Определение ВА было основано на удлинении времени свертывания с использованием яда гадюки Рассела (англ. dilute Russel’s viper venom time, dRVVT), производитель CoaDATA 4004 (Германия).
Этические аспекты / Ethical aspects
Исследование проведено в соответствии с этическими стандартами Хельсинской декларации Всемирной медицинской ассоциации 1964 г. и ее последующими изменениями. До включения в исследование пациенты давали свое устное и письменное согласие. Исследование было одобрено локальным этическим комитетом Сеченовского Университета, протокол № 10-21 от 17.06.2021.
Статистический анализ / Statistical analysis
Вычисляли абсолютные и относительные частоты (% от общего числа наблюдений), медианы с интерквартильным интервалом (Ме [Q25; Q75]).
Формализация и формирование собранных клинических данных выполнялась на базе электронной таблицы Microsoft Excel. Обработка статистических данных проводилась с использованием программного обеспечения SPSS для Windows, версия 26.0 (SPSS, США). Для определения статистической значимости различий средних величин использовали U-критерия Манна–Уитни. Для выявления статистической значимости сравниваемых признаков использовали однофакторный дисперсионный анализ с расчетом точного критерия Фишера или критерий χ2 с поправкой на правдоподобие в зависимости от количества сопряжённых признаков. Результаты считали статистически значимыми при p < 0,05.
Результаты и обсуждение / Results and Discussion
В исследовании приняли участие в общей сложности 130 человек, включая 70 онкологических больных основной группы и 60 здоровых женщин контрольной группы, соответствующих по возрасту (табл. 1, 2).
Таблица 1. Стадии рака у пациентов основной группы (n = 70).
Table 1. Cancer stages in main group patients (n = 70).
Тип рака Cancer type |
Категория классификации TNM, стадия |
Значение Value |
n (%) |
Рак шейки матки, С53, n = 8 Cervical cancer, C53, n = 8 |
Т |
2 |
4 (50,0) |
3 |
4 (50,0) |
||
N |
1 |
8 (100,0) |
|
M |
0 |
8 (100,0) |
|
Стадия Stage |
Ib1 |
4 (50,0) |
|
IIIa |
4 (50,0) |
||
Рак тела матки, C54, n = 38 Uterine cancer, C54, n = 38 |
Т |
1 |
6 (16,0) |
2 |
22 (58,0) |
||
4 |
10 (26,0) |
||
N |
0 |
6 (16,0) |
|
1 |
28 (74,0) |
||
2 |
4 (10,0) |
||
М |
0 |
34 (90,0) |
|
1 |
4 (10,0) |
||
Стадия Stage |
Ia |
12 (32,0) |
|
Ib |
12 (32,0) |
||
IIIa |
6 (16,0) |
||
IIIc |
4 (10,0) |
||
IV |
4 (10,0) |
||
Рак яичников, С56, n = 24 Ovarian cancer, C56, n = 24 |
Т |
2 |
6 (25,0) |
3 |
2 (8,0) |
||
4 |
16 (67,0) |
||
N |
0 |
10 (42,0) |
|
1 |
14 (58,0) |
||
М |
0 |
22 (92,0) |
|
1 |
2 (8,0) |
||
Стадия Stage |
Ia |
2 (8,0) |
|
Ic |
2 (8,0) |
||
II |
2 (8,0) |
||
IIIc |
16 (67,0) |
||
IV |
2 (8,0) |
Примечание: T – опухоль; N – узел; M – метастаз.
Note: T – tumor; N – nodes; M – metastasis.
Таблица 2. Антропометрические данные.
Table 2. Anthropometric data.
Показатель Parameter |
Основная группа Main group n = 70 |
Контрольная группа Control group n = 60 |
р |
|
Возраст, лет, Me [Q25; Q75] Age, years, Me [Q25; Q75] |
49,0 [ 42,0; 59,0] |
46,0 [ 35,0; 53,3] |
0,119 |
|
ИМТ, кг/м2, Me [Q25; Q75] BMI, kg/m2, Me [Q25; Q75] |
25,1 [ 23,1; 29,1] |
25,9 [ 21,1; 27,9] |
0,689 |
|
ИМТ, кг/м2, n (%) BMI, kg/m2, n (%) |
Дефицит веса, ИМТ < 18,5 Weight deficiency, BMI < 18,5 |
0 |
6 (10,0) |
0,623 |
Нормальный вес, 18,5 ≤ ИМТ < 25 Normal weight, 18,5 ≤ BMI < 25 |
22 (31,0) |
22 (37,0) |
||
Избыточный вес, 25 ≤ ИМТ < 30 Overweight, 25 < BMI ≤ 30 |
32 (46,0) |
22 (37,0) |
||
Ожирение I степени, 30 ≤ ИМТ < 35 Obesity degree I, 30 ≤ BMI < 35 |
6 (9,0) |
8 (13,0) |
||
Ожирение II степени, 35 ≤ ИМТ < 40 Obesity degree II, 35 ≤ BMI < 40 |
6 (9,0) |
2 (3,0) |
||
Ожирение III степени, ИМТ ≥ 40 Obesity degree III, ИМТ ≥ 40 |
4 (6,0) |
0 |
Примечание: ИМТ – индекс массы тела; р – значимость различий между группами.
Note: BMI – body mass index; p – significant inter-group differences.
Общая характеристика участниц исследования представлена в таблице 2. Не было статистических различий по возрасту и индексу массы тела (ИМТ) в обеих группах.
В основной группе было статистически значимо больше (p < 0,002) женщин в менопаузе (табл. 3).
Отмечено статистически значимое увеличение значений АЧТВ (табл. 4) у онкогинекологических пациенток по сравнению со здоровыми женщинами (р = 0,004), что связано с циркуляцией АФА в основной группе.
Таблица 3. Гинекологический анамнез.
Table 3. Gynecological anamnesis.
Показатель Parameter |
Основная группа Main group n = 70 |
Контрольная группа Control group n = 60 |
р |
Менопауза, n (%) |
62 (89,0) |
26 (43,0) |
0,002 |
Возраст начала менопаузы, лет, Me [Q25; Q75]Menopause-onset age, years, Me [Q25; Q75] |
50,0 [ 48,0; 51,0] |
48,0 [ 46,3; 50,0] |
0,228 |
Возраст начала менархе, лет, Me [Q25; Q75] |
13,0 [ 12,0; 14,0] |
13,0 [ 12,0; 14,0] |
0,855 |
Продолжительность цикла, дни, Me [Q25; Q75] |
28,0 [ 28,0; 28,0] |
28,0 [ 28,0; 29,3] |
0,832 |
Продолжительность менархе, дни, Me [Q25; Q75]Menarche length, days, Me [Q25; Q75] |
5,0 [ 5,0; 5,5] |
5,0 [ 5,0; 6,25] |
0,807 |
Беременность, n (%) |
58 (83,0) |
50 (83,0) |
0,880 |
Количество беременностей, Me [Q25; Q75] |
3,5 [ 1,0; 4,25] |
1,0 [ 2,0; 3,0] |
0,365 |
Роды, n (%) |
56 (80,0) |
44 (73,0) |
0,743 |
Количество родов, Me [Q25; Q75] |
1,0 [ 1,0; 2,0] |
1,0 [ 0,75; 2,00] |
0,569 |
Аборты, n (%) |
40 (57,0) |
22 (37,0) |
0,215 |
Количество абортов, Me [Q25; Q75] |
1,5 [ 0,0; 2,0] |
0,0 [ 0,0; 2,0] |
0,102 |
Примечание: выделены значимые различия между группами.
Note: significant inter-group differences are highlighted.
Таблица 4. Показатели гемостаза.
Table 4. Hemostasis parameters.
Показатель Parameter |
Нормальные значения Normal values |
Основная группа Main group n = 70 Me [Q25; Q75] |
Контрольная группа Control group n = 60 Me [Q25; Q75] |
р |
АЧТВ, с / APTT, s |
20–40 |
31,2 [ 29,9; 34,4] |
28,0 [ 27,0; 31,0] |
0,004 |
Фибриноген, г/л / Fibrinogen, g/L |
2–4 |
2,90 [ 2,48; 3,20] |
2,70 [ 2,58; 3,00] |
0,562 |
Протромбиновое время, с |
11–16 |
14,0 [ 12,0; 15,0] |
13,0 [ 12,0; 14,3] |
0,242 |
Протромбиновый индекс, % |
80–110 |
89,0 [ 85,0; 103,0] |
90,5 [ 82,3; 103,0] |
0,636 |
Тромбиновое время, с / Thrombin time, s |
14–21 |
17,5 [ 16,0; 19,0] |
17,0 [ 15,0; 19,0] |
0,495 |
МНО / INR |
0,85–1,35 |
0,995 [ 0,95; 1,00] |
0,995 [ 0,95; 1,00] |
0,830 |
Примечание: АЧТВ – активированное частичное тромбопластиновое время; МНО – международное нормализованное отношение; выделены значимые различия между группами.
Note: APTT – activated partial thromboplastin time; INR – international normalized ratio; significant inter-group differences are highlighted.
Проведено сравнение пациенток с онкологической патологией со здоровыми женщинами по наличию АФА (табл. 5). У 24 (34,28 %) пациенток основной группы была выявлена циркуляция АФА. В 20 случаях это были низкие титры АФА и в 4 случаях – высокие титры. Из них антитела к β2-GР1 изотипа IgG были обнаружены у 6 пациенток, антитела к β2-GР1 изотипа IgM – у 4 женщин с онкогинекологическим диагнозом; aCL IgG встретились у 1 пациентки, aCL IgM – у 8; антитела к аннексину V IgG – у 10, IgM – также у 10 пациенток; антитела к PS-PT IgG – у 4, IgM – у 4 пациенток. В контрольной группе АФА были обнаружены у 4 (6,7 %) женщин: антитела к β2-GР1 IgM – у 2, антитела к β2-GР1 IgG – у 2, антитела к аннексину V IgM – у 2 обследованных.
Таблица 5. Циркуляция антифосфолипидных антител.
Table 5. Antiphospholipid antibodies level.
Показатель Parameter |
Нормальные значения, МЕ/мл |
Основная группа Main group n = 70 Me [Q25; Q75] |
Контрольная группа Control group n = 60 Me [Q25; Q75] |
р |
Антитела к кардиолипину, IgG Anti-cardiolipin antibodies, IgG |
< 10 |
0,72 [ 0,43; 2,72] |
0,99 [ 0,42; 1,49] |
0,242 |
Антитела к кардиолипину, IgМ Anti-cardiolipin antibodies, IgM |
< 7 |
3,55 [ 0,92; 12,34] |
1,65 [ 1,00; 2,11] |
0,030 |
Антитела к β2-гликопротеину 1, IgG Anti-β2-glycoprotein 1 antibodies, IgG |
< 5 |
3,38[ 0,81; 13,70] |
2,86 [ 0,45; 11,79] |
0,783 |
Антитела к β2-гликопротеину 1, IgМ Anti-β2-glycoprotein 1 antibodies, IgM |
< 5 |
2,04 [ 0,37; 14,49] |
0,99 [ 0,42; 1,23] |
0,174 |
Антитела к аннексину V, IgG Annexin V antibodies, IgG |
< 5 |
4,41 [ 1,29; 12,00] |
2,11 [ 0,86; 11,59] |
0,432 |
Антитела к аннексину V, IgM Annexin V antibodies, IgM |
< 5 |
3,90 [ 0,77; 12,38] |
1,86 [ 0,96; 2,71] |
0,012 |
Антитела к фосфатидилсерин-протромбиновому комплексу, IgG Anti-phosphatidylserine-prothrombin complex antibodies, IgG |
< 12 |
4,22 [ 1,06; 37,65] |
2,12 [ 1,33; 3,00] |
0,257 |
Антитела к фосфатидилсерин-протромбиновому комплексу, IgM Anti-phosphatidylserine-prothrombin complex antibodies, IgM |
< 12 |
7,91 [ 1,06; 99,98] |
2,40 [ 0,84; 3,20] |
0,280 |
Примечание: выделены значимые различия между группами.
Note: significant inter-group differences are highlighted.
У 10 (14,2 %) из 70 женщин основной группы в анамнезе были тромбозы (9 случаев венозного тромбоза и 1 артериальный тромбоз): 1 – тромбоз глубоких вен (ТГВ) левой голени, гетерозиготная форма мутации в гене фактора V Лейден; 2 – илеофеморальный тромбоз слева, из сопутствующих заболеваний – цирроз печени, псориаз; 3 – тромбоз подколенных артерий, циркуляция ВА, гетерозиготная форма мутации в гене фактора V Лейден; 4 – тромбоэмболия легочной артерии (ТЭЛА), циркуляция aCL изотипа IgM, антитела к PS-PT изотипов IgG и IgM; 5 – тромбоз параметральных вен, циркуляция антител к β2-GР1 изотипа IgM; 6 – ТГВ левой голени после химиотерапии; 7 – ТЭЛА после хирургического вмешательства; 8 – илеофеморальный тромбоз, циркуляция anti-β2-GР1 изотипа IgM; 9 – катетер-ассоциированный тромбоз, антитела к PS-PT изотипа IgM и к аннексину V изотипа IgG; 10 – тромбоз параметральных вен.
Обращает на себя внимание, что у 5 из 10 женщин с отягощенным тромботическим анамнезом наблюдалась циркуляция АФА. В одном случае тромбоза у АФА-позитивной онкобольной был выявлен высокий титр АФА. В 3 случаях наблюдался низкий титр АФА, однако имела место одновременная циркуляция двух видов антител – к кардиолипину и PS-PT, либо к PS-PT и к аннексину V. У пятой пациентки были выявлены циркуляция АФА и гетерозиготная мутация в гене FV Лейден. Изолированная циркуляция АФА была выявлена лишь у 4 женщин с тромбозами. Статистически значимых различий между онкологическими пациентками с тромбозами и без тромботических осложнений в анамнезе выявлено не было (табл. 6).
Обращает на себя внимание выявленная статистически значимая взаимосвязь между циркуляцией aCL (IgG, IgM) и антител к PS-PT (IgG, IgM) и стадией онкологического процесса у пациенток основной группы (табл. 7).
Исследование влияния АФА на рецидив заболевания (табл. 8) показал значимую взаимосвязь с уровнем антител к кардиолипину изотипа IgM (p = 0,017).
С целью выявления предикторов среди оцениваемых показателей (АФА), оказывающих значимое влияние на безрецидивную выживаемость больных с раком, проведен многофакторный анализ с использованием модели пропорциональных рисков (регрессия Кокса). В таблице 9 представлены показатели отношения рисков, полученные при использовании модели пропорциональных рисков Кокса.
Сформированная модель не имеет статистической значимости (р = 0,078). Также исследованные факторы не повлияли на безрецидивную выживаемость больных с онкологическими заболеваниями.
Таблица 6. Циркуляция антифосфолипидных антител у онкологических больных (основная группа) в зависимости от наличия и отсутствия тромбоза в анамнезе.
Table 6. A relation between antiphospholipid antibodies level related to former thrombosis in cancer patients (main group).
Показатель Parameter |
Нормальные значения, МЕ/мл Normal values, |
Пациентки с тромбозом Patients with thrombosis n = 10 Me [Q25; Q75] |
Пациентки без тромбоза Patients without thrombosis n = 60 Me [Q25; Q75] |
р |
Антитела к кардиолипину, IgG Anti-cardiolipin antibodies, IgG |
< 10 |
2,64 [ 0,99; 5,59] |
0,68 [ 0,66; 4,34] |
0,541 |
Антитела к кардиолипину, IgМ Anti-cardiolipin antibodies, IgM |
< 7 |
3,17 [ 1,82; 5,18] |
7,00 [ 4,58; 7,14] |
0,359 |
Антитела к β2-гликопротеину 1, IgG Anti-β2-glycoprotein 1 antibodies, IgG |
< 5 |
2,01 [ 0,78; 3,84] |
3,90 [ 3,51; 4,92] |
0,173 |
Антитела к β2-гликопротеину 1, IgМ Anti-β2-glycoprotein 1 antibodies, IgM |
< 5 |
4,01 [ 0,86; 6,85] |
5,50 [ 3,27; 5,73] |
0,827 |
Антитела к аннексину V, IgG Annexin V antibodies, IgG |
< 5 |
3,20 [ 2,01; 4,40] |
4,38 [ 3,97; 5,69] |
0,275 |
Антитела к аннексину V, IgM Annexin V antibodies, IgM |
< 5 |
3,72 [ 1,68; 4,12] |
2,95 [ 2,08; 3,58] |
0,694 |
Антитела к фосфатидилсерин-протромбиновому комплексу, IgG Anti-phosphatidylserine-prothrombin complex antibodies, IgG |
< 12 |
5,60 [ 1,80; 8,50] |
2,61 [ 2,21; 7,55] |
0,896 |
Антитела к фосфатидилсерин-протромбиновому комплексу, IgM Anti-phosphatidylserine-prothrombin complex antibodies, IgM |
< 12 |
4,96 [ 2,83; 6,38] |
3,61 [ 3,15; 8,76] |
0,827 |
Таблица 7 (начало). Циркуляция антифосфолипидных антител у онкологических больных (основная группа) в зависимости
от стадии онкологического процесса.
Table 7 (beginning). A relation between level of circulating antiphospholipid antibodies and stage of oncological process in cancer patients (main group).
Показатель Parameter |
Нормальные значения, МЕ/мл Normal values, |
Стадия заболевания Disease stage n (%) |
Значение Parameter value Me [Q25; Q75] |
р |
Антитела к кардиолипину, IgG Anti-cardiolipin antibodies, IgG |
< 10 |
I – 34 (48,6) |
1,50 [ 0,67; 4,17] |
pI–II = 0,885; рI–III = 0,325; pI–IV = 0,026; рII–III = 0,557; рII–IV = 0,408; рIII–IV = 0,994 |
II – 6 (8,6) |
1,29 [ 0,86; 4,72] |
|||
III – 24 (34,2) |
4,12 [ 1,41; 8,91] |
|||
IV – 6 (8,6) |
6,39 [ 5,58; 7,20] |
|||
Антитела к кардиолипину, IgМ Anti-cardiolipin antibodies, IgM |
< 7 |
I – 34 (48,6) |
3,01 [ 1,08; 5,42] |
pI–II = 0,693; рI–III = 1,0; рI–IV = 0,021; рII–III = 0,860; рII–IV = 0,408; рIII–IV = 0,392 |
II – 6 (8,6) |
3,17 [ 1,45; 5,22] |
|||
III – 24 (34,2) |
3,83 [ 1,73; 5,80] |
|||
IV – 6 (8,6) |
15,2 [ 11,1; 19,4] |
|||
Антитела к β2-гликопротеину 1, IgG Anti-β2-glycoprotein 1 antibodies, IgG |
< 5 |
I – 34 (48,6) |
2,56 [ 1,07; 4,12] |
рI–II = 0,946; рI–III = 0,990; рI–IV = 1,0; рII–III = 0,953; рII–IV = 1,0; рIII–IV = 1,0 |
II – 6 (8,6) |
1,67 [ 1,50; 1,84] |
|||
III – 24 (34,2) |
2,34 [ 1,54; 3,51] |
|||
IV – 6 (8,6) |
2,34 [ 1,56; 3,12] |
|||
Антитела к β2-гликопротеину 1, IgМ Anti-β2-glycoprotein 1 antibodies, IgM |
< 5 |
I – 34 (48,6) |
3,84 [ 0,89; 5,51] |
рI–II = 0,983; рI–III = 0,653; рI–IV = 0,354; рII–III = 0,862; рII–IV = 0,408; рIII–IV = 0,723 |
II – 6 (8,6) |
2,44 [ 1,65; 3,22] |
|||
III – 24 (34,2) |
5,62 [ 2,01; 7,72] |
|||
IV – 6 (8,6) |
9,96 [ 7,73; 12,2] |
Антифосфолипидные антитела как потенциальный фактор прогрессии опухоли
Таблица 7 (окончание). Циркуляция антифосфолипидных антител у онкологических больных (основная группа) в зависимости от стадии онкологического процесса.
Table 7 (ending). A relation between level of circulating antiphospholipid antibodies and stage of oncological process in cancer patients
(main group).
Показатель Parameter |
Нормальные значения, МЕ/мл Normal values, |
Стадия заболевания Disease stage n (%) |
Значение Parameter value Me [Q25; Q75] |
р |
Антитела к аннексину V, IgG Annexin V antibodies, IgG |
< 5 |
I – 34 (48,6) |
3,63 [ 2,53; 5,01] |
рI–II = 0,983; рI–III = 0,653; рI–IV = 0,354; рII–III = 0,862; рII–IV = 0,408; рIII–IV = 0,723 |
II – 6 (8,6) |
1,65 [ 1,47; 1,83] |
|||
III – 24 (34,2) |
4,22 [ 2,80; 4,40] |
|||
IV – 6 (8,6) |
3,88 [ 2,33; 5,43] |
|||
Антитела к аннексину V, IgM Annexin V antibodies, IgM |
< 5 |
I – 34 (48,6) |
3,89 [ 3,00; 4,34] |
pI–II = 0,919; рI–III = 0,899; pI–IV = 0,185; рII–III = 0,994; pII–IV = 0,408; рIII–IV = 0,320 |
II – 6 (8,6) |
3,14 [ 2,71; 3,58] |
|||
III – 24 (34,2) |
2,90 [ 1,68; 4,14] |
|||
IV – 6 (8,6) |
0,605 [ 0,307; 0,902] |
|||
Антитела к фосфатидилсерин-протромбиновому комплексу, IgG Anti-phosphatidylserine-prothrombin complex antibodies, IgG |
< 12 |
I – 34 (48,6) |
2,17 [ 1,41; 3,41] |
pI–II = 0,998; рI–III = 0,011; рI–IV = 0,026; рII–III = 0,260; рII–IV = 0,408; рIII–IV = 0,862 |
II – 6 (8,6) |
3,51 [ 2,46; 4,55] |
|||
III – 24 (34,2) |
8,54 [ 8,10; 11,7] |
|||
IV – 6 (8,6) |
11,8 [ 11,4; 12,1] |
|||
Антитела к фосфатидилсерин-протромбиновому комплексу, IgM Anti-phosphatidylserine-prothrombin complex antibodies, IgM |
< 12 |
I – 34 (48,6) |
4,80 [ 2,87; 5,74] |
рI–II = 0,885; рI–III = 0,996; pI–IV = 0,012; рII–III = 1,0; рII–IV = 0,408; рIII–IV = 0,200 |
II – 6 (8,6) |
3,75 [ 2,95; 4,56] |
|||
III – 24 (34,2) |
3,92 [ 1,30; 7,92] |
|||
IV – 6 (8,6) |
13,2 [ 12,8; 13,6] |
Примечание: выделены значимые различия в уровне антител у онкологических пациенток с различными стадиями (I–IV) заболевания.
Note: significantly differed antibodies level in cancer patients at varying disease stages (I–IV) is highlighted.
Таблица 8. Циркуляция антифосфолипидных антител у онкологических больных (основная группа) в зависимости от наличия рецидива.
Table 8. Relapse-based antiphospholipid antibodies level in cancer patients (main group).
Показатель Parameter |
Нормальные значения, МЕ/мл |
Пациентки с рецидивом Relapsed patients n = 32 Me [Q25; Q75] |
Пациентки без рецидива Non-relapsed patients n = 38 Me [Q25; Q75] |
р |
Антитела к кардиолипину, IgG Anti-cardiolipin antibodies, IgG |
< 10 |
0,65 [ 0,56; 2,40] |
1,21 [ 0,70; 1,77] |
0,254 |
Антитела к кардиолипину, IgМ Anti-cardiolipin antibodies, IgM |
< 7 |
3,17 [ 2,33;6,15] |
1,82 [ 0,92; 2,40] |
0,017 |
Антитела к β2-гликопротеину 1, IgG Anti-β2-glycoprotein 1 antibodies, IgG |
< 5 |
0,94 [ 0,67; 1,94] |
0,81 [ 0,32; 1,08] |
0,253 |
Антитела к β2-гликопротеину 1, IgМ Anti-β2-glycoprotein 1 antibodies, IgM |
< 5 |
1,38 [ 0,81; 4,06] |
0,77 [ 0,43 – 1,35] |
0,062 |
Антитела к аннексину V, IgG Annexin V antibodies, IgG |
< 5 |
1,90 [ 0,39; 4,22] |
2,46 [ 0,49; 4,34] |
0,756 |
Антитела к аннексину V, IgM Annexin V antibodies, IgM |
< 5 |
1,68 [ 0,02; 3,33] |
1,76 [ 0,69; 3,96] |
0,442 |
Антитела к фосфатидилсерин-протромбиновому комплексу, IgG Anti-phosphatidylserine-prothrombin complex antibodies, IgG |
< 12 |
4,70 [ 1,80; 8,20] |
2,24 [ 1,47; 5,93] |
0,361 |
Антитела к фосфатидилсерин-протромбиновому комплексу, IgM Anti-phosphatidylserine-prothrombin complex antibodies, IgM |
< 12 |
5,20 [ 2,77; 8,37] |
2,68 [ 1,96; 4,28] |
0,198 |
Примечание: выделены значимые различия в уровне антител у онкологических пациенток с рецидивом и без рецидива заболевания.
Note: significantly differed antibodies level in relapsed vs. non-relapsed cancer patients is highlighted.
Таблица 9. Связь между уровнем анализируемого параметра и безрецидивной выживаемостью.
Table 9. A relation between analyzed parameter level and relapse-free survival.
Показатель Parameter |
Нормальные значения, МЕ/мл Normal values, IU/ml |
р |
Антитела к кардиолипину, IgG Anti-cardiolipin antibodies, IgG |
< 10 |
0,136 |
Антитела к кардиолипину, IgМ Anti-cardiolipin antibodies, IgM |
< 7 |
0,276 |
Антитела к β2-гликопротеину 1, IgG Anti-β2-glycoprotein 1 antibodies, IgG |
< 5 |
0,186 |
Антитела к β2-гликопротеину 1, IgМ Anti-β2-glycoprotein 1 antibodies, IgM |
< 5 |
0,181 |
Антитела к аннексину V, IgG Annexin V antibodies, IgG |
< 5 |
0,474 |
Антитела к аннексину V, IgM Annexin V antibodies, IgM |
< 5 |
0,144 |
Антитела к фосфатидилсерин-протромбиновому комплексу, IgG Anti-phosphatidylserine-prothrombin complex antibodies, IgG |
< 12 |
0,218 |
Антитела к фосфатидилсерин-протромбиновому комплексу, IgM Anti-phosphatidylserine-prothrombin complex antibodies, IgM |
< 12 |
0,734 |
Заключение / Conclusion
Хорошо известна патогенетическая роль АФА в развитии тромбозов и акушерских осложнений. Однако весьма ограничено количество исследований, посвященных распространенности и роли АФА у больных с аденокарциномой шейки матки, тела матки и аденокарциномой яичников. Наши результаты показывают, что умеренные или низкие титры АФА присутствуют у большого числа пациентов (34,2 %) с раком тела матки, шейки матки и раком яичников, что указывает на специфическую связь с онкогинекологическими опухолями. Как известно, пациенты с активными злокачественными новообразованиями подвержены высокому риску развития венозных и артериальных тромбозов, и в начале исследования мы предполагали, что циркуляция АФА является одним из факторов, который увеличивает этот риск. Однако мы не обнаружили достоверной взаимосвязи между циркуляцией АФА и развитием тромбозов у данных онкобольных. Не было выявлено статистически значимых различий между онкогинекологическими пациентками с тромбозами и без тромботических осложнений у женщин с онкогинекологическим раком. Возможно, это связано с тем, что в большинстве случаев определялся низкий титр АФА. Другой причиной может быть определение только изотипов IgG и IgM, но не изотипа IgA, наличие которого строго коррелирует с тромбозами.
Также по результатам нашего исследования АФА не оказали влияния на безрецидивную выживаемость пациенток с онкогинекологическим раком. Однако обращает на себя внимание выявление статистически значимой взаимосвязи между циркуляцией АФА и степенью онкологического процесса: наличие aCLs изотипов IgG и IgM и антител к PS-PT изотипов IgG и IgM было ассоциировано с более тяжелой степенью опухолевого процесса. Кроме того, была обнаружена значимая связь уровня антител к кардиолипину изотипа IgM с рецидивом заболевания, что указывает на возможную патогенетическую роль АФА как потенциального фактора риска развития или прогрессирования рака шейки матки, тела матки и яичников. Поскольку связь АФА с тромбозами хорошо известна, основные исследования патологического влияния АФА при раке в основном сосредоточены на ТЭО, которые распространены при многих злокачественных новообразованиях. Хотя тромбозы и являются визитной карточкой АФС, помимо острого тромбоза АФС-пациенты демонстрируют другие нетромботические проявления (сетчатое ливедо, гемолитическая анемия, когнитивная дисфункция, хорея, судороги, пороки клапанов сердца, окклюзионная васкулопатия, легочная гипертензия, нефропатия, тромбоцитопения и др.), которые реализуются через активацию моноцитов, тромбоцитов, эндотелиальных клеток, систему воспаления, формирование внеклеточных ловушек нейтрофилов. Возможно, АФА являются специфичным для пациента фактором, способствующим ангиогенному переключению опухоли и, как следствие, инвазии и прогрессии опухоли.
Необходимы дальнейшие крупномасштабные исследования, чтобы установить, могут ли антитела к фосфолипидам использоваться в качестве диагностического инструмента при онкогинекологических заболеваниях для выявления пациентов с риском прогрессирования заболевания, рецидива рака и риска развития ТЭО.
Список литературы
1. Gris J.C., Mousty É., Bouvier S. et al. Increased incidence of cancer in the follow-up of obstetric antiphospholipid syndrome within the NOH-APS cohort. Haematologica. 2020;105(2):490–7. https://doi.org/10.3324/haematol.2018.213991.
2. Cabrera-Marante O., Rodríguez de Frías E., Serrano M. et al. The weight of IgA anti-β2glycoprotein I in the antiphospholipid syndrome pathogenesis: closing the gap of seronegative antiphospholipid syndrome. Int J Mol Sci. 2020;21(23):8972. https://doi.org/10.3390/ijms21238972.
3. Yoon K.H., Wong A., Shakespeare T., Sivalingam P. High prevalence of antiphospholipid antibodies in Asian cancer patients with thrombosis. Lupus. 2003;12(2):112–6. https://doi.org/10.1191/0961203303lu328oa.
4. Kansuttiviwat C., Niprapan P., Tantiworawit A. et al. Impact of antiphospholipid antibodies on thrombotic events in ambulatory cancer patients. PLoS One. 2023;18(1):e0279450. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0279450.
5. Vassalo J., Spector N., de Meis E. et al. Antiphospholipid antibodies in critically ill patients with cancer: a prospective cohort study. J Crit Care. 2014;29(4):533–8. https://doi.org/10.1016/j.jcrc.2014.02.005.
6. Gómez-Puerta J.A., Cervera R., Espinosa G. et al. Antiphospholipid antibodies associated with malignancies: clinical and pathological characteristics of 120 patients. Semin Arthritis Rheum. 2006;35(5):322– 32. https://doi.org/10.1016/j.semarthrit.2005.07.003.
7. Sawamura M., Yamaguchi S., Murakami H. et al. Multiple autoantibody production in a patient with splenic lymphoma. Ann Hematol. 1994;68(5):251–4. https://doi.org/10.1007/BF01737426.
8. Tincani A., Taraborelli M., Cattaneo R. Antiphospholipid antibodies and malignancies. Autoimmun Rev. 2010;9(4):200–2. https://doi.org/10.1016/j.autrev.2009.04.001.
9. Benvenuto M., Mattera R., Masuelli L. et al. The crossroads between cancer immunity and autoimmunity: antibodies to self antigens. Front Biosci (Landmark Ed). 2017;22(8):1289–329. https://doi.org/10.2741/4545.
10. Cuadrado M.J., Buendía P., Velasco F. et al. Vascular endothelial growth factor expression in monocytes from patients with primary antiphospholipid syndrome. J Thromb Haemost. 2006;4(11):2461–9. https://doi.org/10.1111/j.1538-7836.2006.02193.x.
11. Wu Y.Y., Nguyen A.V., Wu X.X. et al. Antiphospholipid antibodies promote tissue factor-dependent angiogenic switch and tumor progression. Am J Pathol. 2014;184(12):3359–75. https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2014.07.027.
12. Viall C.A., Chen Q., Liu B.et al. Antiphospholipid antibodies internalised by human syncytiotrophoblast cause aberrant cell death and the release of necrotic trophoblast debris. J Autoimmun. 2013;47:45–57. https://doi.org/10.1016/j.jaut.2013.08.005.
13. Nocella C., Bartimoccia S., Cammisotto V. et al.; SMiLe Group. Oxidative stress in the pathogenesis of antiphospholipid syndrome: implications for the atherothrombotic process. Antioxidants (Basel). 2021;10(11):1790. https://doi.org/10.3390/antiox10111790.
14. Štok U., Čučnik S., Sodin-Šemrl S., Žigon P. Extracellular vesicles and antiphospholipid syndrome: state-of-the-art and future challenges. Int J Mol Sci. 2021;22(9):4689. https://doi.org/10.3390/ijms22094689.
15. Kogure A., Yoshioka Y., Ochiya T. Extracellular vesicles in cancer metastasis: potential as therapeutic targets and materials. Int J Mol Sci. 2020;21(12):4463. https://doi.org/10.3390/ijms21124463.
16. Kalluri R., McAndrews K.M. The role of extracellular vesicles in cancer. Cell. 2023;186(8):1610–26. https://doi.org/10.1016/j.cell.2023.03.010.
17. Kasthuri R.S., Taubman M.B., Mackman N. Role of tissue factor in cancer. J Clin Oncol. 2009;27(29):4834–8. https://doi.org/10.1200/ JCO.2009.22.6324.
18. Khorana A.A., Mackman N., Falanga, A. et al. Cancer-associated venous thromboembolism. Nat Rev Dis Primers. 2022;8(1):11. https://doi.org/10.1038/s41572-022-00336-y.
19. Abu Zaanona M.I., Mantha S. Cancer-associated thrombosis. 2023 Jul 17. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing, 2023 Jan. 20. Mukai M., Oka T. Mechanism and management of cancer-associated thrombosis. J Cardiol. 2018;72(2):89–93. https://doi.org/10.1016/j.jjcc.2018.02.011.
20. Dambrauskienė R., Gerbutavičius R., Rudžianskienė M. et al. Antiphospholipid antibodies and the risk of thrombosis in myeloproliferative neoplasms. Open Life Sciences. 2023;18(1):20220545. https://doi.org/10.1515/biol-2022-0545
21. Trousseau A. Phlegmasia alba dolens Clinique Medical de L’Hotel-Dieu deParis, Vol. 3. The New Sydenham Society, London, 1865. 94 p.
22. Metharom P., Falasca M., Berndt M.C. The history of Armand Trousseau and cancer-associated thrombosis. Cancers (Basel). 2019;11(2):158. https://doi.org/10.3390/cancers11020158.
23. Слуханчук Е.В., Бицадзе В.О., Солопова А.Г. и др. Взаимодействие внеклеточных ловушек нейтрофилов и антифосфолипидных антител у онкологических больных. Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2023;22(3):54–62. https://doi.org/10.20953/1726-1678-2023-3-54-62.
24. Zuckerman E., Toubi E., Golan T.D. et al. Increased thromboembolic incidence in anti-cardiolipin-positive patients with malignancy. Br J Cancer. 1995;72(2):447–51. https://doi.org/10.1038/bjc.1995.353.
Об авторах
З. Д. АслановаРоссия
Асланова Замиля Джамалидиновна – аспирант кафедры акушерства, гинекологии и перинатальной медицины Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова
119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4
Д. Х. Хизроева
Россия
Хизроева Джамиля Хизриевна – д.м.н., профессор кафедры акушерства, гинекологии и перинатальной медицины Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова. Scopus Author ID: 57194547147. Researcher ID: F-8384-2017.
119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4
А. Г. Солопова
Россия
Солопова Антонина Григорьевна – д.м.н., профессор кафедры акушерства, гинекологии и перинатальной медицины Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова. Scopus Author ID: 6505479504. Researcher ID: Q-1385-2015.
119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4
В. О. Бицадзе
Россия
Бицадзе Виктория Омаровна – д.м.н., профессор РАН, профессор кафедры акушерства, гинекологии и перинатальной медицины Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова. Scopus Author ID: 6506003478. Researcher ID: F-8409-2017.
119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4
А. В. Воробьев
Россия
Воробьев Александр Викторович – к.м.н., доцент кафедры акушерства, гинекологии и перинатальной медицины Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова. Scopus Author ID: 57191966265. Researcher ID: F-8804-2017.
119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4
Ж.-К. Гри
Франция
Гри Жан-Кристоф – д.м.н., профессор кафедры акушерства, гинекологии и перинатальной медицины Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова; профессор гематологии, зав. лабораторией гематологии факультета биологических и фармацевтических наук Университета Монпелье и Университетской больницы Нима; иностранный член РАН. Scopus Author ID: 7005114260. Researcher ID: AAA-2923-2019.
119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4; 34090 Монпелье, ул. Огюста Бруссоне, д. 163.
И. Элалами
Франция
Элалами Исмаил – д.м.н., профессор кафедры акушерства, гинекологии и перинатальной медицины Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова; профессор медицинского; директор гематологии Центра Тромбозов, Госпиталь Тенон. Scopus Author ID: 7003652413. Researcher ID: AAC-9695-2019.
119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4; 75006 Париж, Улица медицинского факультета, д. 12; 75020 Париж, Китайская улица, д. 4.
Н. А. Макацария
Россия
Макацария Наталия Александровна – к.м.н., доцент кафедры акушерства, гинекологии и перинатальной медицины Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова. Researcher ID: F-8406-2017.
119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4
Д. Ю. Заболотная
Россия
Диана Юрьевна Заболотная – ординатор кафедры акушерства, гинекологии и перинатальной медицины Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова
119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4
Рецензия
Для цитирования:
Асланова З.Д., Хизроева Д.Х., Солопова А.Г., Бицадзе В.О., Воробьев А.В., Гри Ж., Элалами И., Макацария Н.А., Заболотная Д.Ю. Антифосфолипидные антитела как потенциальный фактор прогрессии опухоли. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2024;18(1):8-22. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2024.473
For citation:
Aslanova Z.D., Khizroeva J.Kh., Solopova A.G., Bitsadze V.O., Vorobev A.V., Gris J., Elalamy I., Makatsariya N.A., Zabolotnaya D.Yu. Antiphospholipid antibodies as a potential factor of tumor progression. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2024;18(1):8-22. (In Russ.) https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2024.473

Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.