Preview

Акушерство, Гинекология и Репродукция

Расширенный поиск

Дисрегуляция функции тромбоцитов у больных COVID-19

https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2022.372

Содержание

Перейти к:

Аннотация

Более чем двухлетний опыт наблюдений за пациентами с тяжелой коронавирусной болезнью показал повышенный риск тромбозов макро- и микроциркуляторного русла, клинически проявляющихся инфарктом, инсультом, тромбозами редких локализаций (тромбоз печеночных вен, мезентериальных вен, синусов головного мозга, воротной вены), что является основной причиной неблагоприятных исходов. Было отмечено, что тромбоэмболические осложнения, выраженные в виде сепсис-индуцированной коагулопатии, диссеминированного внутрисосудистого свертывания крови, венозной и артериальной тромбоэмболии, эмболии легочной артерии, микротромбоза и тромботической микроангиопатии, поражают различные органы, такие как легкие, сердце, почки и головной мозг. Ранее мы писали о том, что гиперкоагуляция тесно связана с воспалительными заболеваниями и дизрегуляцией гемостаза. Повреждение и дисфункция эндотелия были определены как критические пути к тромбообразованию, а также были описаны и другие механизмы, происходящие в микрососудистой сети, такие как активация эндотелия, цитокиновый шторм и образование внеклеточных ловушек нейтрофилов (англ. neutrophil extracellular traps, NETs). Однако роль тромбоцитов в тяжелых случаях COVID-19 не была изучена. Тромбоциты – небольшие безъядерные клетки, которые наиболее известны как центральные медиаторы гемостаза. Однако при активации тромбоциты выделяют множество иммуномодулирующих цитокинов и хемокинов, которые участвуют в регуляции иммунного ответа. Поскольку тромбоциты участвуют как в иммунитете, так и в коагуляции, они играют центральную роль в иммунотромбозе, физиологическом процессе, при котором иммунные клетки индуцируют образование микротромбов как для предотвращения распространения патогенов, так и для облегчения их выведения. Более того, тромбоциты могут непосредственно взаимодействовать с вирусными рецепторами, в том числе с коронавирусной инфекцией. Дисфункция тромбоцитов включает в себя как тромбоцитопению, так и гиперактивацию тромбоцитов. Следует отметить, что упорная тромбоцитопения, как правило, коррелирует со смертностью и связана с тромбозом церебральных синусов, спланхнической системы, аутоиммунными реакциями, а также с применением гепарина и вакцин, поэтому в данном обзоре рассматривается роль тромбоцитов в патогенезе COVID-19.

Для цитирования:


Гашимова Н.Р., Бицадзе В.О., Панкратьева Л.Л., Хизроева Д.Х., Слуханчук Е.В., Григорьева К.Н., Цибизова В.И., Гри Ж., Элалами И., Ай Ц., Блинов Д.В., Серов В.Н., Макацария А.Д. Дисрегуляция функции тромбоцитов у больных COVID-19. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2022;16(6):692-705. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2022.372

For citation:


Gashimova N.R., Bitsadze V.O., Pankratyeva L.L., Khizroeva J.Kh., Slukhanchuk E.V., Grigoreva K.N., Tsibizova V.I., Gris J., Elalamy I., Ay C., Blinov D.V., Serov V.N., Makatsariya A.D. Dysregulated platelet function in COVID-19 patients. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2022;16(6):692-705. (In Russ.) https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2022.372

ВВЕДЕНИЕ / INTRODUCTION

COVID-19 – потенциально тяжёлая острая респираторная инфекция, вызываемая коронавирусом SARS-CoV-2 и приводящая к острой лёгочной недостаточности, повреждению эндотелия, иммунотромбозу, нарушению баланса между коагуляцией и воспалением и к активации тромбоцитов [1]. Часто у пациентов с COVID-19 обнаруживаются тромбозы глубоких вен (ТГВ) и тромбоэмболия легочных артерий (ТЭЛА) [2][3]. У пациентов с COVID-19 в отделении интенсивной терапии частота венозных тромбоэмболических осложнений (ВТЭО) составляет 36–46 % по разным источникам [4][5]. Подобно венозному тромбозу, у 1–5 % пациентов с COVID-19 встречаются артериальные тромбозы (ишемический инсульт, острый коронарный синдром, ишемия конечностей и брыжейки) [6]. Как правило, тяжелое течение инфекции SARS-CoV-2 наблюдается при сильной воспалительной реакции из-за высвобождения и инфильтрации нейтрофилов в различных органах с образованием внеклеточных ловушек нейтрофилов (англ. neutrophil extracellular traps, NETs), активацией тромбоцитов и цитокиновым штормом [7].

Тромбоциты представляют собой небольшие безъядерные плоские бесцветные клетки, образующиеся из мегакариоцитов, и традиционно известны своей ролью в предотвращении кровотечений и минимизации сосудистых повреждений [8]. Однако на сегодняшний день известна негемостатическая роль тромбоцитов как активных участников воспалительных и иммунных реакций на микробные организмы при инфекционных заболеваниях. Это связано с их способностью высвобождать множество воспалительных и биологически активных молекул, хранящихся в их гранулах [9]. Эти медиаторы способны привлекать и модулировать активность циркулирующих лейкоцитов, что важно для организации локализованных иммунных реакций на патогенные микроорганизмы [10]. Кроме того, тромбоциты обладают прямыми эффекторными функциями и способны взаимодействовать с вирусными рецепторами [11]. Действительно, было доказано, что мегакариоциты и тромбоциты экспрессируют несколько иммуно-ассоциированных молекул и рецепторов, включая Fc-рецепторы [12], рецепторы комплемента [13], рецепторы хемокинов [14] и множество толл-подобных рецепторов (англ. toll-like receptors, TLR) [15].

Иммунные функции тромбоцитов в ответ на вирусные инфекции стали ключевыми участниками защиты хозяина, которые при дисрегуляции могут способствовать заболеванию [16]. Гиперактивация тромбоцитов была признана отличительной чертой многих вирусных инфекций, включая лихорадку денге [17], вирусы иммунодефицита человека [18] и гриппа [19], в том числе вирус SARS-CoV-2 [20]. Характерной особенностью SARS-CoV-2 в отличие от других вирусных инфекций является коагулопатия с аномальными изменениями в системе гемостаза. Склонность вируса поддерживать тромботические события может быть связана с его способностью изменять физиологию эндотелия, иммунных клеток и тромбоцитов.

Вирус SARS-CoV-2 может индуцировать как местную, так и системную активацию тромбоцитов, включая высвобождение воспалительных цитокинов, которые играют роль как в распространении COVID-19, так и в генерации цитокинового шторма.

COVID-19 И ТРОМБОЦИТОПЕНИЯ / COVID-19 AND THROMBOCYTOPENIA

Многие вирусные и бактериальные инфекции, как правило, ассоциируются с тромбоцитопенией [21]. Независимые исследования со всего мира привели многочисленные сообщения о том, что COVID-19 также следует этой тенденции. Умеренная тромбоцитопения является общей чертой инфекции SARS-CoV-2, в то время как значительно сниженное количество тромбоцитов встречается редко и, вероятно, представляет собой развивающуюся коагулопатию [22]. Тромбоцитопения при COVID-19 является показателем плохого прогноза, особенно когда количество тромбоцитов уменьшается в первые 7 дней после госпитализации, что говорит о том, что тромбоцитопения является независимым фактором риска, связанным со смертностью при COVID-19.

Существуют различные механизмы, лежащие в основе тромбоцитопении, ассоциированной с COVID-19 (рис. 1).

Рисунок 1. Возможные механизмы, приводящие к тромбоцитопении (адаптировано из [23]).
Figure 1. Potential mechanisms leading to thrombocytopenia (adapted from [23]).

Считается, что SARS-CoV-2 напрямую заражает костный мозг через определенные рецепторы и ингибирует кроветворение, снижая образование первичных тромбоцитов, что приводит к тромбоцитопении [24]. Сходство нуклеотидов между SARS-CoV-2 и тяжёлым острым респираторным синдромом (SARS?CoV) составляет 82 %, а поскольку SARS-CoV и коронавирус человека 229E (HCoV-229E) проявляют эквивалентные антигенные свойства, многие авторы предполагают, что антигены SARS-CoV-2 и HCoV?229E родственны. HCoV-229E достигает клеток костного мозга и тромбоцитов через рецептор аланинаминопептидазы (аминопептидаза-N; CD13) [25][26]. CD13 – мембранный белок, относящийся к классу металлопротеаз, является маркером гранулоцитов и моноцитов, обнаруживаемый в эпителиальных клетках дыхательных путей, гладкомышечных клетках, фибробластах, почках и эпителиальных клетках тонкой кишки, лимфоцитах и тромбоцитах [27]. Таким образом, полагаясь на данный механизм, можно предположить, что SARS-CoV-2 вызывает тромбоцитопению также, как SARS-CoV и HCoV-229E [24].

J. Ropa с коллегами исследовали экспрессию ангиотензинпревращающего фермента 2 (англ. angiotensin-converting enzyme 2, ACE2), с которым связывается спайковый белок SARS-CoV-2, в гемопоэтических стволовых клетках (англ. hematopoietic stem cells, HSCs), полученных из пуповинной крови, и показали, что ACE2 экспрессируется в 65 % HSCs [28]. Таким образом, возможно, что SARS-CoV-2 может непосредственно поражать HSCs, снижая первичную продукцию тромбоцитов.

Другим механизмом снижения продукции тромбоцитов является вторичный гемофагоцитарный лимфогистиоцитоз (secondary hemophagocytic lymphohistiocytosis, sHLH), также известный как синдром массивной активации макрофагов (англ. macrophage activation syndrome, MAS) [29]. MAS вызывается чрезмерным расширением и активацией мононуклеарных макрофагов, что приводит к выработке большого количества воспалительных цитокинов и потреблению значительного количества клеток крови. При SARSCoV2 Т-лимфоциты сверхактивируются и продуцируют гранулоцитарно-макрофагальный колониестимулирующий фактор (англ. granulocyte-macrophage colony-stimulating factor, GM-CSF) и интерлейкин-6 (англ. interleukin-6, IL-6) [30][31]. GM-CSF стимулирует CD14+CD16+, воспалительные мононуклеарные макрофаги для выработки большего количества IL-6 и других факторов воспаления, что приводит к цитокиновому шторму и иммунологическому повреждению легких и полиорганной недостаточности. Цитокиновый шторм ведет к разрушению гемопоэтических клеток-предшественников в костном мозге со снижением первичной выработки тромбоцитов, что приводит к тромбоцитопении в периферической крови [32][33].

Еще одним важным механизмом уменьшения числа циркулирующих тромбоцитов является их повышенное потребление. Как уже известно, легкие пациентов с коронавирусной инфекцией характеризуются диффузным повреждением альвеол, застойными явлениями, задержкой жидкости, фиброзом и расширением гиалиновой мембраны [34]. Повреждение легочной ткани и микрососудистого эндотелия может приводить к активации тромбоцитов, агрегации, образованию микрососудистых тромбов и секвестрации тромбоцитов легкими [33].

Существуют также альтернативные механизмы, которые включают антитромбоцитарные аутоантитела и иммунные комплексы, приводящие к тромбоцитопении. Иммунные комплексы часто состоят из иммуноглобулинов (англ. immunoglobulin, Ig) типа IgG или IgM, но также могут быть IgA. Антитела и иммунные комплексы, осажденные на поверхности тромбоцитов, распознаются ретикулоэндотелиальными клетками и разрушаются как ткани-мишени, что приводит и к разрушению тромбоцитов [35][36], Кроме того, более трети иммуногенных белков при SARS-CoV-2 содержат гомологичные белки, являющиеся частью иммунной адаптивной системы человека. В этих случаях развитие иммунной тромбоцитопении связано с презентацией антигена главного комплекса гистосовместимости (англ. major histocompatibility complex, MHC) класса I и II, а также сигнализацией программированной гибели клеток-1 PCD1 (англ. рrogrammed cell death-1; CD279) из-за аномального иммунного ответа на гомологичные белки [37][38].

Тромбоциты содержат только один рецептор FcγRIIa (CD32) на своей поверхности и, таким образом, способны связывать IgG-специфические иммунные комплексы [39]. Наиболее характерным расстройством в этом случае является гепарин-индуцированная тромбоцитопения (ГИТ) [40]. ГИТ – протромботическое осложнение, которое возникает после лечения гепарином. Согласно клиническим рекомендациям, антитромботическая терапия пациентов с COVID-19 включает использование гепарина. Такая неблагоприятная лекарственная реакция вызывается IgG-специфическими антителами, нацеленными на тромбоцитарный фактор 4 (англ. platelet factor 4, PF4) с образованием иммунных комплексов и активацией тромбоцитов через рецептор СD32 [41]. Иммунные комплексы также участвуют в активации моноцитов и клеток эндотелия, что приводит к экспрессии тканевого фактора (англ. tissue factor, TF), активации внешнего пути свертывания и продукции воспалительных цитокинов [42]. Активация тромбоцитов и повреждение эндотелиальных клеток увеличивают синтез тромбина, что и приводит к возникновению клинической картины. Появление в плазме IgG происходит в среднем на 4–10-е сутки, что совпадает с началом клинических проявлений, таких как ТГВ нижних конечностей, ТЭЛА, тромбоз церебрального синуса, а также артериальные тромбозы с нарушением мозгового кровообращения и инфарктом миокарда [43]. Риск ГИТ в 10 раз ниже при использовании низкомолекулярного гепарина (НМГ) по сравнению с нефракционированным гепарином (НФГ); таким образом, для тромбопрофилактики при COVID-19 предпочтительнее НМГ [44].

Было бы упущением не затронуть вакцин-индуцированную тромботическую тромбоцитопению (англ. vaccine induced immune thrombotic thrombocytopenia, VITT) в контексте активации тромбоцитов и COVID-19. VITT – это расстройство, связанное с вакцинацией аденовирусными векторнымми вакцинами ChAd-Ox1 (AstraZeneca) и Ad26.COV2.S (Johnson & Johnson). VITT была впервые описана у 11 пациентов, у которых появились тромбозы необычной локализации (в церебральных синусах и абдоминальных венах) и тромбоцитопения [45]. VITT, как и ГИТ, является анти-PF4-опосредованным антителами расстройством, которое вызывает активацию тромбоцитов и тромбоз.

Таким образом, тромбоцитопения при COVID-19 является показателем плохого прогноза, особенно когда количество тромбоцитов уменьшается в первые 7 дней после госпитализации, что говорит о том, что тромбоцитопения является независимым фактором риска, связанным со смертностью при COVID-19 (рис. 2).

Рисунок 2. Модель «Айсберг тромбоцитопении» [рисунок авторов].
Примечание: ADAMTS-13 – дизинтегрин-подобная металлопротеаза с мотивом тромбоспондина 1; vWF – фактор фон Виллебранда; PF4 – тромбоцитарный фактор 4; GM-CSF – гранулоцитарно-макрофагальный колониестимулирующий фактор; IL-6 – интерлейкин 6; IL-1β – интерлекин 1β; TNF-α – фактор некроза опухоли-альфа; TF – тканевой фактор; АРА – антифосфолипидные антитела; ГИТ – гепарининдуцированная тромбоцитопения; ВИИТ – вакцин-индуцированная тромботическая тромбоцитопения.
Figure 2. A "Thrombocytopenia Iceberg" model [drawn by authors].
Note: ADAMTS-13 – a disintegrin and metalloprotease with thrombospondin type 1 motif; vWF – von Willebrand factor; PF4 – platelet factor 4; GM-CSF – granulocyte-macrophage colony-stimulating factor; IL-6 – interleukin 6; IL-1β – interlekin 1β; TNF-α – tumor necrosis factor-alpha; TF – tissue factor; AРA – antiphospholipid antibodies; HIT – heparin-induced thrombocytopenia; VITT – vaccine-induced thrombotic thrombocytopenia

ГИПЕРАКТИВАЦИЯ ТРОМБОЦИТОВ ПРИ SARS-COV-2 / PLATELET HYPERACTIVATION IN SARS-COV-2 INFECTION

Активация тромбоцитов при COVID-19 происходит с помощью различных механизмов, которые включают специфичный для SARS-CoV-2 механизм и фактор, опосредованный воспалением [46]. В первом случае SARS-CoV-2 поражает клетки путем связывания спайкового белка с ACE2, который экспрессирует на альвеолярных эпителиальных клетках, энтероцитах, моноцитах, тромбоцитах и эндотелиальных клетках сосудов [47]. Связывание эндотелиальных клеток со спайковым белком вируса приводит к снижению экспрессии ACE2, а далее к снижению преобразования ангиотензина II в ангиотензин 1-7. Повышение уровня ангиотензина II стимулирует сужение сосудов, а снижение уровня ангиотензина 1-7 усиливает провоспалительную реакцию и риск тромбообразования за счет сужения сосудов и адгезии лейкоцитов к тромбоцитам [48]. Более того, имеются данные о прямом вирусном заражении тромбоцитов и мегакариоцитов. Вирус SARS-CoV-2 может быть обнаружен в тромбоцитах [49], и по крайней мере одно исследование показывает, что тромбоциты не только экспрессируют ACE2 и мембраносвязанную сериновую протеазу (агнл. transmembrane protease, serine 2, TMPRSS2), но и что спайковый белок SARS-CoV-2 напрямую связывает ACE2 и усиливают активацию тромбоцитов in vitro [47]. Другие предположительные механизмы захвата SARS-CoV-2 тромбоцитами могут включать эндоцитоз с помощью TLRs, лектиноподобного рецептора-2 С-типа (англ. C-type lectin-like receptor-2, CLEC?2) или эмпериполеза мегакариоцитов [50][51].

Стимулом для активации тромбоцитов при COVID-19 также может быть рост клеток-супрессоров полиморфноядерного миелоидного происхождения [52], поскольку было обнаружено, что эти клетки сверхэкспрессируют медиаторы L-аргинина, аргиназы-1 и синтазы оксида азота (англ. NO-synthase, NOS) [53].

Другим немаловажным фактором активации тромбоцитов является продолжающееся воспаление, которое может приводить к формированию гипервоспалительного ответа. Как правило, первыми в очаг воспаления выходят нейтрофилы, они обнаруживаются в воспаленной ткани уже через 6–24 ч. Как известно, нейтрофилы являются наиболее распространенными циркулирующими лейкоцитами (40–70 % белых кровяных телец) и представляют собой первую и самую мощную клеточную линию защиты хозяина, поскольку они способны убить большинство патогенов в течение нескольких часов. Нейтрофилы представляют собой подвижные клетки, которые проникают в ткани, недоступные другим лейкоцитам [54]. Нейтрофильные механизмы уничтожения микробных патогенов включают фагоцитоз, дегрануляцию и образование активных видов кислорода и азота, а также высвобождение NETs, которые представляют собой сеть внеклеточных волокон, в основном состоящих из ДНК нейтрофилов, для уничтожения патогенных микроорганизмов [55]. Способность нейтрофилов контролируемым образом вытеснять свою ДНК во внеклеточную среду в процессе активации (нетоза), чтобы ловить и уничтожать патогенные микроорганизмы, является уникальным инструментом врожденного иммунного ответа [56]. Основной путь передачи сигнала, инициирующий нетоз, включает мобилизацию кальция, генерацию активных форм кислорода НАДФН-оксидазой (англ. NAPDH-nicotinamide adenine dinucleotide phosphate oxidase), перенос из цитоплазмы в ядро нейтрофильной эластазы, миелопероксидазы (англ. myeloperoxidase, МРО), пептидил-аргинин деиминазы 4 (англ. peptidyl arginine deiminase 4, PAD4) и цитруллинирование гистонов [57].

Эксперимент на мышах показал, что гистоны и ДНК NETs активируют макрофаги и другие иммунные клетки через TLR-9 с последующей стимуляцией высвобождения фактора некроза опухоли-альфа (англ. tumor necrosis factor alpha, TNF-α), IL-6 и IL-1β с индукцией циткинового шторма [58][59] Провоспалительные цитокины приводят к неконтролируемым взаимодействиям между NETs и макрофагами с последующим прогрессирующим воспалением [60]. Неконтролируемая активация NETs может привести к чрезмерной активации макрофагов и провоспалительных цитокинов, тромбоцитов [61]. Уровни NETs в плазме крови коррелируют с вирусной нагрузкой SARS-CoV-2 и связанными с ней воспалительными цитокинами и хемокинами [62]. Кроме активации тромбоцитов, NETs влияют на различные звенья гемостаза (рис. 3) [63]. Считается, что наличие цитокинового шторма является одним из основных факторов активации тромбоцитов с помощью воспалительных цитокинов, таких как IL-6, IL-1β и TNF-α [64].

Рисунок 3. Влияние внеклеточных ловушек нейтрофилов (NETs) на систему гемостаза [63].
Примечание: АРС – активированный протеин С; t-PA – тканевой активатор плазминогена; PAI-1 – ингибитор активатора плазминогена-1; ADAMTS-13 – дизинтегрин-подобная металлопротеаза с мотивом тромбоспондина 1.
Figure 3. Neutrophil extracellular traps (NETs) affecting hemostasis [63].
Note: APC – activated protein C; t-PA – tissue plasminogen activator; PAI-1 – plasminogen activator inhibitor-1; ADAMTS-13 – a disintegrin and metalloprotease with thrombospondin type 1 motif.

Гиперактивация тромбоцитов стимулирует повышенное высвобождение внеклеточных везикул α- и плотных гранул тромбоцитов в кровоток. Более того, у пациентов с COVID-19 повышается количество некоторых молекул, высвобождаемых активированными тромбоцитами, включая серотонин, растворимый Р-селектин, растворимый CD40L, фактор роста тромбоцитов (англ. platelet-derived growth factor, PDGF), PF4 и фактор фон Виллебранда (англ. von Willebrand factor, vWF) [65]. Как известно, vWF также участвует в активации тромбоцитов [66]. Высокий уровень PF4 наблюдается как в тяжелых, так и в нетяжелых случаях COVID-19, в то время как P-селектин повышается в тяжелых случаях COVID-19, в том числе осложненных респираторным дистресс-синдромом [67].

K. Althaus с соавт. в своем исследовании показали, что инкубация сывороток и фракций IgG от пациентов с тяжелой формой COVID-19 с тромбоцитами, выделенными от здоровых доноров, привела к увеличению экспресии фосфатидилсерина (англ. phosphatidylserine, PS) и увеличению цитозольного кальция. Это указывает на то, что антитела IgG, присутствующие у пациентов с тяжелой формой COVID-19, могут индуцировать прокоагулянтные реакции in vivo через рецептор FcyRIIa, что вызывает активацию и агрегацию тромбоцитов [68]. На сегодняшний день вклад прокоагулянтных тромбоцитов в риск тромбоза при COVID-19 четко не определен и, возможно, не является наиболее вредным аспектом активации тромбоцитов. Основываясь на имеющихся на сегодняшний день доказательствах, коагулопатия при COVID-19, скорее всего, является результатом тромбовоспаления, которое способствует повышению уровня Р-селектина, активации интегрина aIIbβ3 и патологическим взаимодействиям между тромбоцитами, лейкоцитами и эндотелиальными клетками [22]. Патологические уровни Р-селектина приводят к активации лейкоцитов, индуцируют экспрессию TF и стимулируют нейтрофилы к образованию NETs, что косвенно способствует гиперкоагуляции тромбоцитов [69][70].

Тромбоциты, выделенные у пациентов с COVID-19, гиперреактивны к традиционным агонистам, таким как АДФ, коллаген и тромбин, по сравнению с тромбоцитами здоровых пациентов, что указывает на сенсибилизацию тромбоцитов, вызванную вирусом. Состояние активации тромбоцитов является результатом интеграции как стимулирующих, так и ингибирующих сигнальных путей. Активация тромбоцитов при COVID-19, по-видимому, частично обусловлена увеличением таких факторов, как протеинкиназа С дельтатипа (англ. protein kinase C delta-type, PRKCD), внеклеточная сигнальная киназа и митоген-активируемая протеинкиназа p38 [71]. Другие исследователи аналогичным образом продемонстрировали повышенную активацию и агрегацию тромбоцитов в ответ на стимуляцию низкими дозами агонистов, а также усиленное высвобождение АДФ, тромбаксана А2, β-тромбоглобулина и АТФ тромбоцитами, выделенными у пациентов с COVID-19 [68]. АДФ и тромбоксан А2 действуют как местные аутокринные агонисты, которые дополнительно усиливают активацию тромбоцитов и дальнейшее высвобождение содержимого гранул [71], тем самым подпитывают состояние, при котором реактивность тромбоцитов повышается при COVID-19.

В дополнение к активации тромбоцитов стоит сказать об уникальных изменениях транскриптома, которые происходят в тромбоцитах пациентов с COVID-19. Исследование транскриптома у госпитализированных пациентов показало значительные различия в экспрессии матричной РНК (мРНК) 3325 генов по сравнению со здоровыми пациентами [72]. Другое исследование показало значительное различие в протеомике и метаболомике сыворотки крови между пациентами с тяжелой формой COVID-19 и контрольной группой, в том числе резкое снижение уровня 15 из 17 белков, участвующих в дегрануляции тромбоцитов, в частности β-тромбоглобулина и PF4 [73], что говорит о значительном изменении фенотипа тромбоцитов.

A. Kruger с соавт. в недавном исследовании показали, что гиперактивация тромбоцитов сохраняется длительнее время у пациентов с постковидным синдромом (англ. post-COVID-19 syndrome, Long COVID). Они обнаружили повышенные уровни vWF и PF4 у этих больных. Фактор фон Виллебранда может способствовать развитию коагулопатий, которые наблюдаются у пациентов с Long COVID. Также при микроскопии и протеомике была выявлена значительная гиперактивность тромбоцитов у пациентов с постковидным синдромом в отличие от здоровых, что имеет существенное значение при диагностике и терапии [74].

СВЯЗЬ ТРОМБОЦИТОВ И ИММУННЫХ КЛЕТОК ПРИ COVID-19 / AN INTERPLAY BETWEEN PLATELETS AND IMMUNE CELLS IN COVID-19

COVID-19 стимулирует не только активацию тромбоцитов, но и патологическое взаимодействие с различными иммунными клетками: моноцитами, макрофагами и нейтрофилами (рис. 4). При COVID-19 P-cелектин тромбоцитов связывает лиганды нейтрофилов [75], инициируя высвобождение NETs посредством передачи сигналов через TLR4 тромбоцитов [76] и секрецию содержимого гранул тромбоцитов [62]. Вытесненные нити хроматина обеспечивают агрегацию тромбоцитов и образование тромбов, а открытые гистоновые белки активируют тромбоциты через TLR4 и TLR2, что приводит к образованию тромбина [77]. Нейтрофильные сериновые протеазы разрушают ингибитор пути ТF, что способствует тромбообразованию. Таким образом, взаимодействие гиперреактивных тромбоцитов и нейтрофилов приводит к иммунотромбозу и накоплению NETs [78].

Рисунок 4. Связь тромбоцитов и иммунных клеток при COVID-19 (адаптировано из [22]).
Примечание: NETs – внеклеточные ловушки нейтрофилов; ADP – аденозиндифосфат; PF4 – тромбоцитарный фактор 4; sCD40L – растворимый лиганд CD40; TGF-β – трансформирующий фактор роста-бета; TxA2 – тромбоксан A2, FI – фибриноген; vWF – фактор фон Виллебранда; 5-HT – серотонин; GPIIb/IIIa – гликопротеин GPIIb/IIIa.
Figure 4. An interplay between platelets and immune cells in COVID-19 (adapted from [22]).
Note: NETs – neutrophil extracellular traps; ADP – adenosine diphosphate; PF4 – platelet factor 4; sCD40L – soluble CD40 ligand; TGF-β – transforming growth factor-beta; TxA2 – thromboxane A2; FI – fibrinogen; vWF – von Willebrand factor; 5-HT – serotonin; GPIIb/IIIa – glycoprotein GPIIb/IIIa.

Повышенное образование агрегатов тромбоцитов и моноцитов было показано у пациентов с тяжелой формой COVID-19 по сравнению с пациентами с легкой формой. При стимуляции провоспалительными цитокинами моноциты являются источником прокоагуляционного ТF, который инициирует пути свертывания, опосредованные тромбином [79][80]. В исследованиях E.D. Hottz с соавт. было продемонстрировано, что моноциты, связанные с тромбоцитами, обладали повышенной экспрессией ТF по сравнению со свободными моноцитами. Более того, выделенные тромбоциты от пациентов с тяжелой формой COVID-19 вызывали экспрессию ТF в моноцитах здоровых пациентов. Адгезия тромбоцитов осуществляется через P-селектин и интегрин αIIb/β3 и является основным сигналом для секреции широкого спектра медиаторов, включая прои противовоспалительные цитокины и хемокины [81][82]. Повышенная активация тромбоцитов и экспрессия ТF моноцитами считаются предикторами неблагоприятных исходов у пациентов с COVID-19 при поступлении в отделение интенсивной терапии [83].

Тромбоциты также играют роль во врожденном иммунном ответе посредством экспрессии TLRs и в адаптивном иммунном ответе путем прямого модулирования активации лимфоцитов и MHC класса I [84][85]. Активированные тромбоциты экспрессируют функциональные молекулы MHC I, связанные с α-гранулами, которые могут представлять не только эндогенные антигены стандартным цитозольным путем, но и экзогенные антигены путем перекрестной презентации [86]. Растворимые факторы, содержащиеся в α-гранулах тромбоцитов, такие как CD40L, PF4 и трансформирующий фактор роста-бета (англ. transforming growth factor-beta, TGF-β), обладают иммуномодулирующей активностью [87]. CD40L усиливает реакции CD8+ Т-клеток, а TGF-β регулирует дифференцировку CD4+ Т-клеток, которые могут предотвращать развитие цитокинового шторма [88][89].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ / CONCLUSION

Осложнения, возникающие при тяжелом течении COVID-19, особенно тромботические инциденты в различных органах и системах, представляют высокий риск летального исхода. Сложность ситуации заключается в том, что клиницист встречается с поздними проявлениями заболевания, а клиническая симптоматика является следствием биологических нарушений и множественных эффектов тромбовоспаления, что требует большей диагностики и пристального внимания. Дисрегуляция тромбоцитов играет немаловажную роль при COVID-19, а спектр реакций при этом коррелирует с клиническими исходами. Тромбоцитопения связана с повышенным риском тяжелого течения COVID-19, что может служить простым биомаркером тяжести заболевания и риска смертности пациентов в отделении интенсивной терапии. Дальнейшее изучение механизмов тромбоцитопении может обеспечить ценную теоретическую основу для своевременного лечения и дать более полное понимание этого заболевания. Гиперактивация тромбоцитов вносит вклад в патогенез заболевания как за счет высвобождения медиаторов воспаления, так и за счет тромбоза. Кроме того, тромбоциты могут взаимодействовать с нейтрофилами, моноцитами и лимфоцитами для активации иммунного ответа. Мы считаем, что все эти особенности могут играть ключевую роль в патогенезе COVID-19.

Список литературы

1. Coronavirus Disease (COVID-2019) Weekly Epidemiological Updates and Monthly Operational Update. World Health Organization, 2022. Available at: https://www.who.int/emergencies/diseases/novelcoronavirus-2019/situatio. [Aссessed: 10.09.2022].

2. Cui S., Chen S., Li X. et al. Prevalence of venous thromboembolism in patients with severe novel coronavirus pneumonia. J Thromb Haemost. 2020;18(6):1421–4. https://doi.org/10.1111/jth.14830.

3. Poissy J., Goutay J., Caplan M et al.; Lille ICU Haemostasis COVID-19 Group. Pulmonary embolism in COVID-19 patients: awareness of an increased prevalence. Circulation. 2020;142(2):184–6. https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.120.047430.

4. Lopes R.D., de Barros E. Silva P.G.M., Furtado R.H.M. et al. Therapeutic versus prophylactic anticoagulation for patients admitted to hospital with COVID-19 and elevated D-dimer concentration (ACTION): an open-label, multicentre, randomised, controlled trial. Lancet. 2021;397(10291):2253–63. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(21)01203-4.

5. Mansory E.M., Srigunapalan S., Lazo-Langner A. Venous thromboembolism in hospitalized critical and noncritical COVID-19 patients: a systematic review and meta-analysis. TH Open. 2021;5(3):e286–e294. https://doi.org/10.1055/s-0041-1730967.

6. Lodigiani C., Iapichino G., Carenzo L. et al. Venous and arterial thromboembolic complications in COVID-19 patients admitted to an academic hospital in Milan, Italy. Thromb Res. 2020;191:9–14. https://doi.org/10.1016/j.thromres.2020.04.024.

7. Barnes B.J., Adrover J.M., Baxter-Stoltzfus A. et al. Targeting potential drivers of COVID-19: Neutrophil extracellular traps. J Exp Med. 2020;217(6): e20200652. https://doi.org/10.1084/jem.20200652.

8. Machlus K.R., Italiano J.E. The incredible journey: from megakaryocyte development to platelet formation. J Cell Biol. 2013;201(6):785–96. https://doi.org/10.1083/jcb.201304054.

9. Ribeiro L.S., Branco L.M., Franklin B.S. Regulation of innate immune responses by platelets. Front Immunol. 2019;10:1320. https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.01320.

10. Liu J.Z., van Sommeren S., Huang H. et al; International Multiple Sclerosis Genetics Consortium, International IBD Genetics Consortium. Association analyses identify 38 susceptibility loci for inflammatory bowel disease and highlight shared genetic risk across populations. Nat Genet. 2015;47(9):979–86. https://doi.org/10.1038/ng.3359.

11. Riaz A.H., Tasma B.E., Woodman M.E. et al. Human platelets efficiently kill IgG-opsonized E. coli. FEMS Immunol Med Microbiol. 2012;65(1):78–83. https://doi.org/10.1111/j.1574-695X.2012.00945.x.

12. Martel C., Cointe S., Maurice P. et al. Requirements for membrane attack complex formation and anaphylatoxins binding to collagen-activated platelets. PLoS One. 2011;6(4):e18812. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0018812.

13. Clemetson K.J., Clemetson J.M., Proudfoot A.E. et al. Functional expression of CCR1, CCR3, CCR4, and CXCR4 chemokine receptors on human platelets. Blood. 2000;96(13):4046–54.

14. D'Atri L.P., Etulain J., Rivadeneyra L. et al. Expression and functionality of Toll-like receptor 3 in the megakaryocytic lineage. J Thromb Haemost. 2015;13(5):839–50. https://doi.org/10.1111/jth.12842.

15. Assinger A. Platelets and infection – an emerging role of platelets in viral infection. Front Immunol. 2014;5:649. https://doi.org/10.3389/fimmu.2014.00649.

16. Ojha A., Nandi D., Batra H. et al. Platelet activation determines the severity of thrombocytopenia in dengue infection. Sci Rep. 2017;7:41697. https://doi.org/10.1038/srep41697.

17. Baker J.V. Chronic HIV disease and activation of the coagulation system. Thromb Res. 2013;132(5):495–99. https://doi.org/10.1016/j.thromres.2013.08.016.

18. Jansen A.J.G., Spaan T., Low H.Z. et al. Influenza-induced thrombocytopenia is dependent on the subtype and sialoglycan receptor and increases with virus pathogenicity. Blood Adv. 2020;4(13):2967–78. https://doi.org/10.1182/bloodadvances.2020001640.

19. Ackermann M., Verleden S.E., Kuehnel M. et al. Pulmonary vascular endothelialitis, thrombosis, and angiogenesis in Covid-19. N Engl J Med. 2020;383(2):120–8. https://doi.org/0.1056/NEJMoa2015432.

20. Bonaventura A., Vecchié A., Dagna L. et al. Endothelial dysfunction and immunothrombosis as key pathogenic mechanisms in COVID-19. Nat Rev Immunol. 2021;21(5):319–29. https://doi.org/10.1038/s41577-021-00536-9.

21. Page M.J., Pretorius E. A champion of host defense: a generic large-scale cause for platelet dysfunction and depletion in infection. Semin Thromb Hemost. 2020;46(3):302–19. https://doi.org/10.1055/s-0040-1708827.

22. Mellema R.A., Crandel J., Petrey A.C. Platelet dysregulation in the pathobiology of COVID. Hamostaseologie. 2022;42(4):221–8. https://doi.org/10.1055/a-1646-3392.

23. Zhang Y., Zeng Х., Jiao Y, et al. Mechanisms involved in the development of thrombocytopenia in patients with COVID-19, Thromb Res. 202;193:110–5, https://doi.org/10.1016/j.thromres.2020.06.008.

24. Bobirca A., Bobirca F., Ancu I. et al. COVID-19 – a trigger factor for severe immune-mediated thrombocytopenia in active rheumatoid arthritis. Life (Basel). 2022;12(1):77. https://doi.org/10.3390/life12010077.

25. Xia S., Xu W., Wang Q. et al. Peptide-based membrane fusion inhibitors targeting HCOV-229E spike protein HR1 and HR2 domains. Int J Mol Sci. 2018;19(2):487. https://doi.org/10.3390/ijms19020487.

26. Aldridge R.W., Lewer D., Beale S. et al.; Flu Watch Group. Seasonality and immunity to laboratory-confirmed seasonal coronaviruses (HCoV-NL63, HCoV-OC43, and HCoV-229E): results from the Flu Watch cohort study. Wellcome Open Res. 2020;5:52. https://doi.org/10.12688/wellcomeopenres.15812.2.

27. Wickström M., Larsson R., Nygren P., Gullbo J. Aminopeptidase N (CD13) as a target for cancer chemotherapy. Cancer Sci. 2011;102(3):501–8. https://doi.org/10.1111/j.1349-7006.2010.01826.x.

28. Ropa J., Cooper S., Capitano M. et al. Human hematopoietic stem, progenitor, and immune cells respond ex vivo to SARS-CoV-2 spike protein. Stem Cell Rev Rep. 2021;17(1):253–65. https://doi.org/10.1007/s12015-020-10056-z.

29. Schnaubelt S., Tihanyi D., Strassl R. et al. Hemophagocytic lymphohistiocytosis in COVID-19. Case reports of a stepwise approach. Medicine (Baltimore). 2021;100(12):e25170. https://doi.org/10.1097/MD.0000000000025170.

30. Dimopoulos G., de Mast Q., Markou N. et al. Favorable anakinra responses in severe Covid-19 patients with secondary hemophagocyticlymphohistiocytosis. Cell Host Microbe. 2020;28(1):117–123.e1. https://doi.org/10.1016/j.chom.2020.05.007.

31. Lippi G., Plebani M., Henry B.M. Thrombocytopenia is associated with severe coronavirus disease 2019 (COVID-19) infections: A meta-analysis. Clin Chim Acta. 2020;506:145–8. https://doi.org/10.1016/j.cca.2020.03.022.

32. Bashash D., Hosseini-Baharanchi F.S., Rezaie-Tavirani M. et al. The prognostic value of thrombocytopenia in COVID-19 patients; a systematic review and meta-analysis. Arch Acad Emerg Med. 2020;8(1):e75.

33. Bhattacharjee S., Banerjee M. Immune thrombocytopenia secondary to COVID-19: fsystematic review. SN Compr Clin Med. 2020;2(11):2048–58. https://doi.org/10.1007/s42399-020-00521-8.

34. Bradley B.T., Maioli H., Johnston R. et al. Histopathology and ultrastructural findings of fatal COVID-19 infections in Washington State: a case series. Lancet. 2020;396(10247):320–32. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(20)31305-2.

35. Lee S., Chary M., Salehi I., Bansal R. Immune-mediated adalimumabinduced thrombocytopenia for the treatment of ulcerative colitis. Int J Pharm Pharm Sci. 2015;7(7):456–8.

36. Xu P., Qi Zhou, Xu J. Mechanism of thrombocytopenia in COVID-19 patients. Ann Hematol. 2020;99(6):1205–8. https://doi.org/10.1007/s00277-020-04019-0.

37. Tiwari R., Mishra A.R., Mikaeloff F. et al. In silico and in vitro studies reveal complement system drives coagulation cascade in SARS-CoV-2 pathogenesis. Comput Struct Biotechnol J. 2020;18:3734–44. https://doi.org/10.1016/j.csbj.2020.11.005.

38. Pavord S., Thachil J., Hunt B.J. et al. Practical guidance for the management of adults with immune thrombocytopenia during the COVID-19 pandemic. Br J Haematol. 2020;189(6):1038–43. https://doi.org/10.1111/bjh.16775.

39. McKenzie S.E., Taylor S.M., Malladi P. et al. The role of the human Fc receptor Fcγriia in the immune clearance of platelets: A transgenic mouse model. J Immunol. 1999;162(7):4311–8.

40. Daviet F., Guervilly C., Baldesi O. et al. Heparin-induced thrombocytopenia in severe COVID-19. Circulation. 2020;142(19):1875–7. https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.120.049015.

41. Nazy I., Jevtic S.D., Moore J.C. et al. Platelet-activating immune complexes identified in critically ill COVID-19 patients suspected of heparin-induced thrombocytopenia. J Thromb Haemost. 2021;19(5):1342–7. https://doi.org/10.1111/jth.15283.

42. Jaax M.E., Krauel K., Marschall T. et al. Complex formation with nucleic acids and aptamers alters the antigenic properties of platelet factor 4. Blood. 2013;122(2):272–81. https://doi.org/10.1182/blood-2013-01-478966.

43. Warkentin T.E. Heparin-induced thrombocytopenia: pathogenesis and management. Br J Haematol. 2003;121(4):535–55. https://doi.org/10.1046/j.1365-2141.2003.04334.x.

44. Warkentin T.E. Clinical picture of heparin-induced thrombocytopenia (HIT) and its differentiation from non-HIT thrombocytopenia. Thromb Haemost. 2016;116(5):813–22. https://doi.org/10.1160/TH16-06-0435.

45. Greinacher A., Thiele T., Warkentin T.E. et al. Thrombotic thrombocytopenia after ChAdOx1 nCOV-19 vaccination. N Engl J Med. 2021;384(22):2092–101. https://doi.org/10.1056/NEJMoa2104840.

46. Iba T., Levy J.H. The roles of platelets in COVID-19-associated coagulopathy and vaccine-induced immune thrombotic thrombocytopenia. Trends Cardiovasc Med. 2022;32(1):1–9. https://doi.org/10.1016/j.tcm.2021.08.012.

47. Zhang S., Liu Y., Wang X. et al. SARS-CoV-2 binds platelet ACE2 to enhance thrombosis in COVID-19. J Hematol Oncol. 2020;13(1):120. https://doi.org/10.1186/s13045-020-00954-7.

48. Barrett T.J., Bilaloglu S., Cornwell M. et al. Platelets contribute to disease severity in COVID-19. J Thromb Haemost. 2021;19(12):3139–53. https://doi.org/10.1111/jth.15534.

49. Zaid Y., Puhm F., Allaeys I. et al. Platelets can associate with SARS-Cov-2 RNA and are hyperactivated in COVID-19. Circ Res. 2020;127(11):1404–18. Online ahead of print. https://doi.org/10.1161/CIRCRESAHA.120.317703.

50. Gadanec L.K., McSweeney K.R., Qaradakhi T. et al. Can SARS-CoV-2 virus use multiple receptors to enter host cells? Int J Mol Sci. 2021;22(3):992. https://doi.org/10.3390/ijms22030992.

51. Cunin P., Bouslama R., Machlus K.R. et al. Megakaryocyte emperipolesis mediates membrane transfer from intracytoplasmic neutrophils to platelets. Elife. 2019;8:e44031. https://doi.org/10.7554/eLife.44031.

52. Sacchi A., Grassi G., Notari S. et al. Expansion of myeloid derived suppressor cells contributes to platelet activation by L-arginine deprivation during SARS-CoV-2 infection. Cells. 2021;10(8):2111. https://doi.org/10.3390/cells10082111.

53. Sacchi A., Grassi G., Bordoni V. et al. Early expansion of myeloid-derived suppressor cells inhibits SARS-CoV-2 specific T-cell response and may predict fatal COVID-19 outcome. Cell Death Dis. 2020;11(10):921. https://doi.org/10.1038/s41419-020-03125-1.

54. Nathan C. Neutrophils and immunity: challenges and opportunities. Nat Rev Immunol. 2006;6(3):173–82. https://doi.org/10.1038/nri1785.

55. Borregaard N. Neutrophils, from marrow to microbes. Immunity. 2010;33(5):657–70. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2010.11.011.

56. Hahn S., Giaglis S., Chowdury C.S. et al. Modulation of neutrophil NETosis: interplay between infectious agents and underlying host physiology. Semin Immunopathol. 2013;35(4):439–53. https://doi.org/10.1007/s00281-013-0380-x.

57. Gupta A.K., Giaglis S., Hasler P., Hahn S. Efficient neutrophil extracellular trap induction requires mobilization of both intracellular and extracellular calcium pools and is modulated by cyclosporine A. PLoS One. 2014;9(5):e97088. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0097088.

58. Lai J.J., Cruz F.M., Rock K.L. Immune sensing of cell death through recognition of histone sequences by C-type lectin-receptor-2d causes inflammation and tissue injury. Immunity. 2020;52(1):123–35.e6. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2019.11.013.

59. Arcanjo A., Logullo J., Menezes C.C. et al. The emerging role of neutrophil extracellular traps in severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (COVID-19). Sci Rep. 2020;10(1):196300. https://doi.org/10.1038/s41598-020-76781-0.

60. Batiha G.E., Shaheen H.M., Al-Kuraishy H.M. et al. Possible mechanistic insights into iron homeostasis role of the action of 4-aminoquinolines (chloroquine/hydroxychloroquine) on COVID-19 (SARS-CoV-2) infection. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2021;25(23):7565–84. https://doi.org/10.26355/eurrev_202112_27456.

61. Al-Kuraishy H.M., Al-Gareeb A.I., Alblihed M. et al. COVID-19 in relation to hyperglycemia and diabetes mellitus. Front Cardiovasc Med. 2021;8:644095. https://doi.org/10.3389/fcvm.2021.644095.

62. Khawaja A.A., Taylor K.A., Lovell A.O. et al. HIV antivirals affect endothelial activation and endothelial-platelet crosstalk. Circ Res. 2020;127(11):1365–80. https://doi.org/10.1161/CIRCRESAHA.119.316477.

63. Makatsariya A.D., Slukhanchuk E.V., Bitsadze V.O. et al. Neutrophil extracellular traps: a role in inflammation and dysregulated hemostasis as well as in patients with COVID-19 and severe obstetric pathology. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2021;15(4):335–50. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2021.238.

64. Moore J.B., June C.H. Cytokine release syndrome in severe COVID-19. Science. 2020;368(6490):473–4. https://doi.org/10.1126/science.abb8925.

65. Fard M.B., Fard S.B., Ramazi, S. et al. Thrombosis in COVID-19 infection: Role of platelet activation-mediated immunity. Thromb J. 2021;19(1):59. https://doi.org/10.1186/s12959-021-00311-9.

66. Goshua G., Pine A.B., Meizlish M.L. et al. Endotheliopathy in COVID-19-associated coagulopathy: Evidence from a single-centre, cross-sectional study. Lancet Haematol. 2020;7(8):e575–e582. https://doi.org/10.1016/S2352-3026(20)30216-7.

67. Comer S.P., Cullivan S., Szklanna P.B. et al.; COCOON Study investigators. COVID-19 induces a hyperactive phenotype in circulating platelets. PLoS Biol. 2021;19(2):e3001109. https://doi.org/10.1371/journal.pbio.3001109.

68. Althaus K., Marini I., Zlamal J. et al. Antibody-induced procoagulant platelets in severe COVID-19 infection. Blood. 2021;137(8):1061–71. https://doi.org/10.1182/blood.2020008762.

69. Ivanov I.I., Apta B.H.R., Bonna A.M., Harper M.T. Platelet P-selectin triggers rapid surface exposure of tissue factor in monocytes. Sci Rep. 2019;9(1):13397. https://doi.org/10.1038/s41598-019-49635-7.

70. Etulain J., Martinod K., Wong S.L. et al. P-selectin promotes neutrophil extracellular trap formation in mice. Blood. 2015;126(2):242–6. https://doi.org/10.1182/blood-2015-01-624023.

71. Manne B.K., Denorme F., Middleton E.A. et al. Platelet gene expression and function in patients with COVID-19. Blood. 2020;136(11):1317–29. https://doi.org/10.1182/blood.2020007214.

72. Stalker T.J., Newman D.K., Ma P. et al. Platelet signaling. Handb Exp Pharmacol. 2012;(210):59–85. https://doi.org/10.1007/978-3-642-29423-5_3.

73. Shen B., Yi X., Sun Y. et al. Proteomic and metabolomic characterization of COVID-19 patient sera. Cell. 2020;182(1):59–72.e15. https://doi.org/10.1016/j.cell.2020.05.032.

74. Kruger A., Vlok M., Turner S. et al. Proteomics of fibrin amyloid microclots in long COVID/post-acute sequelae of COVID-19 (PASC) shows many entrapped pro-inflammatory molecules that may also contribute to a failed fibrinolytic system. Cardiovasc Diabetol. 2022;21(1):190. https://doi.org/10.1186/s12933-022-01623-4.

75. Maxwell A.J., Ding J., You Y. et al. Identification of key signaling pathways induced by SARS-CoV2 that underlie thrombosis and vascular injury in COVID-19 patients. J Leukoc Biol. 2020;109(1):35–47. https://doi.org/10.1002/JLB.4COVR0920-552RR.

76. Alvarez A., Rios-Navarro C., Blanch-Ruiz M.A. et al. Abacavir induces platelet-endothelium interactions by interfering with purinergic signalling: a step from inflammation to thrombosis. Antiviral Res. 2017;141:179–85. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2017.03.001.

77. Semeraro F., Ammollo C.T., Morrissey J.H. et al. Extracellular histones promote thrombin generation through platelet-dependent mechanisms: involvement of platelet TLR2 and TLR4. Blood. 2011;118(7):1952–61. https://doi.org/10.1182/blood-2011-03-343061.

78. Middleton E.A., He X.Y., Denorme F. et al. Neutrophil extracellular traps contribute to immunothrombosis in COVID-19 acute respiratory distress syndrome. Blood. 2020;136(10):1169–79. https://doi.org/10.1182/blood.2020007008.

79. Van der Poll T., van de Veerdonk F.L., Scicluna B.P., Netea M.G. The immunopathology of sepsis and potential therapeutic targets. Nat Rev Immunol. 2017;17(7):407–20. https://doi.org/10.1038/nri.2017.36.

80. Skendros P., Mitsios A., Chrysanthopoulou A. et al. Complement and tissue factor-enriched neutrophil extracellular traps are key drivers in COVID-19 immunothrombosis. J Clin Invest. 2020;130(11):6151–7. https://doi.org/10.1172/JCI141374.

81. Hottz E.D., Martins-Gonçalves R. et al. Platelet-monocyte interaction amplifies thromboinflammation through tissue factor signaling in COVID-19. Blood Adv. 2022;6(17):5085–99. https://doi.org/10.1182/bloodadvances.2021006680.

82. Hottz E.D., Azevedo-Quintanilha I.G., Palhinha L. et al. Platelet activation and platelet-monocyte aggregate formation trigger tissue factor expression in patients with severe COVID-19. Blood. 2020;136(11):1330–41. https://doi.org/10.1182/blood.2020007252.

83. Li T., Yang Y., Li Y. et al. Platelets mediate inflammatory monocyte activation by SARS-CoV-2 spike protein. J Clin Invest. 2022;132(4):e150101. https://doi.org/10.1172/JCI150101.

84. Portier I., Campbell R.A. Role of platelets in detection and regulation of infection. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2021;41(1):70–8. https://doi.org/10.1161/ATVBAHA.120.314645.

85. Rolla R., Puricelli C., Bertoni A. et al. Platelets: "multiple choice" effectors in the immune response and their implication in COVID-19 thromboinflammatory process. Int J Lab Hematol. 2021;43(5):895–906. https://doi.org/10.1111/ijlh.13516.

86. Olsson A.K., Cedervall J. The pro-inflammatory role of platelets in cancer. Platelets. 2018;29(6):569–73. https://doi.org/10.1080/09537104.2018.1453059.

87. Semple J.W., Italiano J.E., Freedman J. Platelets and the immune continuum. Nat Rev Immunol. 2011;11(4):264–74. https://doi.org/10.1038/nri2956.

88. Gockel L.M., Nekipelov K., Ferro V. et al. Tumour cell-activated platelets modulate the immunological activity of CD4+, CD8+, and NK cells, which is efficiently antagonized by heparin. Cancer Immunol Immunother. 2022;71:2523–33. https://doi.org/10.1007/s00262-022-03186-5.

89. Flego D., Cesaroni S., Romiti G.F. et al; Vax-SPEED-IT Study Group. Platelet and immune signature associated with a rapid response to the BNT162b2 mRNA COVID-19 vaccine. J Thromb Haemost. 2022;20(4):961–74. https://doi.org/10.1111/jth.15648.


Об авторах

Н. Р. Гашимова
ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет)
Россия

Гашимова Нилуфар Рамиль кызы – аспирант кафедры акушерства, гинекологии и перинатальной медицины Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова

119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4



В. О. Бицадзе
ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет)
Россия

Бицадзе Виктория Омаровна – д.м.н., профессор РАН, профессор кафедры акушерства, гинекологии и перинатальной медицины Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова

Scopus Author ID: 6506003478

Researcher ID: F-8409-2017.

119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4



Л. Л. Панкратьева
ГБУЗ «Городская клиническая больница № 67 имени Л.А. Ворохобова Департамента здравоохранения города Москвы»; ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии имени Дмитрия Рогачева» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Панкратьева Людмила Леонидовна – д.м.н., руководитель научно-клинического центра; врач-неонатолог, врач-гематолог, доцент, профессор кафедры педиатрии и организации здравоохранения

Scopus Author ID: 7006391091

Author ID: 697284.

123423 Москва, ул. Саляма Адиля, д. 2/44;

117997 Москва, ул. Саморы Машела, д. 1



Д. Х. Хизроева
ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет)
Россия

Хизроева Джамиля Хизриевна – д.м.н., профессор кафедры акушерства, гинекологии и перинатальной медицины Клинического института детского
здоровья имени Н.Ф. Филатова

Scopus Author ID: 57194547147

Researcher ID: F-8384-2017.

119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4



Е. В. Слуханчук
ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет)
Россия

Слуханчук Екатерина Викторовна – к.м.н., доцент кафедры акушерства, гинекологии и перинатальной медицины Клинического института детского
здоровья имени Н.Ф. Филатова

119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4



К. Н. Григорьева
ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет)
Россия

Григорьева Кристина Николаевна – ассистент кафедры акушерства, гинекологии и перинатальной медицины Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова

119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4



В. И. Цибизова
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Министерства здравоохранения
Россия

Цибизова Валентина Ивановна – к.м.н., врач акушер-гинеколог НИЛ оперативной гинекологии Института перинатологии и педиатрии, врач отделения функциональной ультразвуковой диагностики

197341 Санкт-Петербург, ул. Аккуратова, д. 2



Ж.-К. Гри
ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет); Университет Монпелье
Россия

Гри Жан-Кристоф – д.м.н., профессор кафедры акушерства, гинекологии и перинатальной медицины Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова; профессор гематологии, зав. лабораторией гематологии факультета биологических и фармацевтических наук; иностранный член РАН

Scopus Author ID: 7005114260

Researcher ID: AAA-2923-2019.

119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4;

34090 Монпелье, ул. Огюста Бруссоне, д. 163



И. Элалами
ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет); Медицинский Университет Сорбонны; Госпиталь Тенон
Россия

Элалами Исмаил – д.м.н., профессор кафедры акушерства, гинекологии и перинатальной медицины Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова; профессор; директор гематологии Центра Тромбозов

Scopus Author ID: 7003652413

Researcher ID: AAC-9695-2019.

119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4;

75006 Париж, Улица медицинского факультета, д. 12;

75020 Париж, Китайская улица, д. 4



Ц. Ай
Венский университет
Австрия

Aй Джихан – д.м.н., профессор, клиническое подразделение гематологии и гемостазиологии, медицинское отделение I

Scopus Author ID: 55356863800.

1010 Вена, Universitätsring, д. 1



Д. В. Блинов
ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет); Институт Превентивной и Социальной Медицины; АНО ДПО «Московский медико-социальный институт имени Ф.П. Гааза»
Россия

Блинов Дмитрий Владиславович – к.м.н., ассистент кафедры спортивной медицины и медицинской реабилитации Института клинической медицины имени Н.В. Склифосовского; руководитель по медицинским и научным вопросам; доцент кафедры спортивной, физической и реабилитационной медицины

Scopus Author ID: 6701744871

Researcher ID: E-8906-2017. RSCI: 9779-8290.

119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4;

127006 Москва, ул. Садовая-Триумфальная, д. 4–10;

123056 Москва, 2-я Брестская ул., д. 5, с. 1–1а



В. Н. Серов
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Серов Владимир Николаевич – д.м.н., профессор, академик РАН, главный научный сотрудник

117997 Москва, ул. Академика Опарина, д. 4



А. Д. Макацария
ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет)
Россия

Макацария Александр Давидович – д.м.н., профессор, академик РАН, зав. кафедрой акушерства, гинекологии и перинатальной медицины Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова

Scopus Author ID: 57222220144

Researcher ID: M-5660-2016.

119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4



Рецензия

Для цитирования:


Гашимова Н.Р., Бицадзе В.О., Панкратьева Л.Л., Хизроева Д.Х., Слуханчук Е.В., Григорьева К.Н., Цибизова В.И., Гри Ж., Элалами И., Ай Ц., Блинов Д.В., Серов В.Н., Макацария А.Д. Дисрегуляция функции тромбоцитов у больных COVID-19. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2022;16(6):692-705. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2022.372

For citation:


Gashimova N.R., Bitsadze V.O., Pankratyeva L.L., Khizroeva J.Kh., Slukhanchuk E.V., Grigoreva K.N., Tsibizova V.I., Gris J., Elalamy I., Ay C., Blinov D.V., Serov V.N., Makatsariya A.D. Dysregulated platelet function in COVID-19 patients. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2022;16(6):692-705. (In Russ.) https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2022.372

Просмотров: 4224


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.


ISSN 2313-7347 (Print)
ISSN 2500-3194 (Online)