Preview

Акушерство, Гинекология и Репродукция

Расширенный поиск

Роль тромбоцитов в противовирусном иммунитете

https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2022.305

Содержание

Перейти к:

Аннотация

Основная роль тромбоцитов традиционно отводится участию в реакциях гемостаза. В последние годы появились данные о негемостатической роли тромбоцитов и их активном участии в реакциях воспаления. Эти функции тромбоцитов предопределены их способностью к активации и секреции различных иммуномодулирующих цитокинов и хемокинов. Кроме этого, активированные тромбоциты могут напрямую взаимодействовать с вирусными рецепторами. Знания о регуляции различных типов клеток тромбоцитами в последние годы растут. Результатом этого взаимодействия является в том числе образование тромбоцитарно-лейкоцитарных агрегатов, фокусирование нейтрофилов в местах повреждения и создание каркаса для образования внеклеточных ловушек. Таким образом, тромбоциты являются не только участниками процессов коагуляции, но и важными игроками воспалительного процесса. В этой лекции подробно освещены вопросы тромбоцитарного контроля и модуляции ответа на вирусную инфекцию, а также возможные мишени для терапевтического воздействия.

Для цитирования:


Слуханчук Е.В., Бицадзе В.О., Хизроева Д.Х., Солопова А.Г., Цибизова В.И., Якубова Ф., Ай Д., Гри Ж., Макацария А.Д. Роль тромбоцитов в противовирусном иммунитете. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2022;16(2):204–212. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2022.305

For citation:


Slukhanchuk E.V., Bitsadze V.O., Khizroeva J.Kh., Solopova A.G., Tsibizova V.I., Yakubova F., Ay C., Gris J., Makatsariya A.D. The role of platelets in antiviral immunity. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2022;16(2):204–212. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2022.305

Биология тромбоцитов / Platelet biology

Тромбоциты представляют собой мелкие безъядерные клетки, образующиеся из мегакариоцитов, которые играют ключевую роль в первичном гемостазе. Фрагментация мегакариоцитов является процессом, регулируемым связыванием тромбопоэтина с его рецептором [1]. В тромбоците нет ядра, однако он богат митохондриальной ДНК и РНК, последняя ответственна за синтез белка [2]. В организме человека циркулирует около 750 млрд тромбоцитов, ежедневно образуется около 200 млрд новых клеток в костном мозге [3] и легких [4]. Циркуляция тромбоцитов продолжается 10 дней, после чего они утилизируются печенью и селезенкой. По мере старения тромбоцит постепенно утрачивает сиаловую кислоту мембраны и снижает накопление тромбопоэтина.

За последние годы появилось все больше данных о роли тромбоцитов в таких патологических процессах, как аутоиммунные реакции [5], опухолевый рост [6] и инфекционный процесс [7]. Небольшие молекулы, нуклеиновые кислоты, липидные медиаторы и белки хранятся в различных типах органелл тромбоцита – альфа-гранулах, плотных гранулах и лизосомальных везикулах [8]. После активации тромбоциты претерпевают резкие изменения формы и высвобождают эти факторы во внеклеточную среду в их растворимом виде или заключенными в биоактивные микровезикулы [9]. Способность тромбоцитов участвовать в иммунных реакциях осуществляется благодаря выбросу различных провоспалительных и биоактивных молекул, хранящихся в их гранулах. Выбрасываемые медиаторы привлекают и модулируют активность циркулирующих лейкоцитов [10]. Тромбоциты, помимо всего прочего, выступают в качестве независимых иммунных эффекторных клеток [11]. Мегакариоциты и тромбоциты экспрессируют несколько иммуноассоциированных молекул и рецепторов, включая Fc-рецепторы [12], рецепторы комплемента [13], хемокиновые рецепторы [14] и ряд toll-подобных рецепторов (англ. toll-like receptors, TLRs) [15].

Тромбоциты и иммунный ответ / Platelets and immune response

Тромбоциты содержат различные мембранные рецепторы, способные обнаруживать патоген-ассоциированные молекулярные фрагменты молекул (англ. pathogen-associated molecular patterns, PAMPs) и молекулярные фрагменты, ассоциированные с повреждениями (англ. damage-associated molecular patterns, DAMPs), например, TLRs [16]. Помимо прямого связывания с патогенами, тромбоциты участвуют в элиминации патогенов, координируя активность иммунных клеток, таких как нейтрофилы, которые связываются с активированными тромбоцитами через гликопротеиновый лиганд-1 P-селектина (англ. P-selectin glycoprotein ligand-1, PSGL-1, CD162) и мигрируют в очаги воспаления [17]. Это же взаимодействие приводит к образованию нейтрофильных везикул c арахидоновой кислотой, которые быстро интернализуются тромбоцитами через антиген макрофагов-1 (англ. macrophage-1 antigen, Mac-1). Попав внутрь, арахидоновая кислота преобразуется в тромбоксан А2 (англ. thromboxane A2, ТХА2). Затем TXA2 тромбоцитарного происхождения активирует нейтрофилы, увеличивая экспрессию молекул межклеточной адгезии 1 (англ. intercellular adhesion molecule 1, ICAM-1), их миграцию и экстравазацию [18].

Серотонин играет важную роль в адгезии нейтрофилов. Тромбоциты являются основным источником периферического серотонина [19]. В месте повреждения эндотелия тромбоциты покрывают большую площадь, мигрирующие нейтрофилы используют каркас тромбоцитов, чтобы прикрепиться и мигрировать к месту воспаления [20].

Было показано, что взаимодействие тромбоцитов и нейтрофилов привлекает к участку воспаления моноциты через CD40–CD40L зависимый механизм [21]. Тромбоциты привлекают моноциты также посредством гетеромеров тромбоцитарного происхождения CCL5 (англ. сhemokine (C-C motif) ligand 5; хемокина (С-С мотив) лиганд 5) и нейтрофильного происхождения HNP1 (англ. human neutrophil peptide 1; пептид нейтрофилов человека 1, альфа-дефензин) [22]. Кроме того, тромбоциты при активации высвобождают содержимое своих альфа-гранул, содержащих такие медиаторы как аденозиндифосфат (АДФ). Связывание АДФ с пуриновыми рецепторами P2Y [23] приводит к быстрой транслокации P-селектина к мембране, усиливающее привлечение нейтрофилов, моноцитов и лимфоцитов к месту повреждения [24]. Высвобождаемый тромбоцитами белок HMGB1 (англ. high-mobility group protein B1; протеин В1 из группы высокомобильных белков) также участвует в привлечении иммунных клеток [25]. Недавние данные in vitro указывают на то, что и CXCL4, также известный как тромбоцитарный фактор 4 (англ. platelet factor 4, PF4) – важный хемокин, секретируемый активированными тромбоцитами, может участвовать в миграции моноцитов при связывании с рецептором CCR1 (англ. C-C chemokine receptor type 1; C-C-рецептор хемокина 1) [26].

Тромбоциты не только привлекают иммунные клетки к участку воспаления, но и активно сами перемещаются в направлении повреждения. Подвижные тромбоциты способны к активной адгезии к эндотелию при помощи АДФ и TXA2. Кроме того, тромбоциты захватывают инфекционные агенты и повышают активность фагоцитов [27]. Бактерии активируют тромбоциты, усиливая их взаимодействие с нейтрофилами, что приводит к усилению фагоцитоза [28]. На мышиных моделях было показано, что мыши с истощенным пулом тромбоцитов склонны к бактериемии, вызываемой Staphylococcus aureus [29]. Также оказалось, что активированные тромбином тромбоциты усиливают поглощение и уничтожение грамположительных бактерий дендритными клетками, макрофагами и нейтрофилами [30]. Тромбоциты могут образовывать агрегаты с эритроцитами, инфицированными малярийными плазмодиями, и уничтожать возбудителя [31].

Микровезикулы тромбоцитов играют важную роль в иммунных реакциях. Они содержат нуклеиновые кислоты, белки, липиды и другие молекулярные составляющие тромбоцитов и мегакариоцитов. Микровезикулы, содержащие микроРНК, могут модулировать транскрипцию мРНК в макрофагах, перепрограммируя их на фагоцитарный фенотип [32].

Тромбоциты и регуляция работы иммунных клеток / Platelets and regulation of immune cell functioning

Цитокины и хемокины являются основой образования, роста, дифференцировки и функционирования иммунных клеток. Адгезия моноцитов к тромбоцитам на фоне воспаления приводит к транслокации ядерного фактора каппа B (англ. nuclear factor kappa B, NF-κB) в ядро, где усиливается экспрессия CCL2 и интерлейкина-8 (англ. interleukin-8, IL-8) моноцитами. CCL5 тромбоцитов активирует высвобождение провоспалительных хемокинов моноцитов и Р-селектинзависимое взаимодействие [33]. Хемокин CXCL4 (англ. chemokine (C-X-C motif) ligand 4; хемокина (С-Х-С мотив) лиганд 4) играет важную роль в системном воспалительном ответе. На фоне воспаления тромбоциты высвобождают CXCL4 через Rac-1 (англ. Ras-related C3 botulinum toxin substrate 1; Ras-связанный С3 субстрат токсина ботулина) путь, привлекая нейтрофилы, повреждая ткани, повышая концентрации CCL5, CXCL1 и CXCL2. Подавление CXCL4 в эксперименте снижает концентрацию провоспалительных маркеров и улучшает общее состояние лабораторных животных [34]. Тромбоциты являются источниками CD40L (CD154), который оказывает выраженное влияние на лейкоциты. При системной красной волчанке (СКВ) было показано, что тромбоциты активируются иммунными комплексами, и затем образуют агрегаты с моноцитами и дентритными клетками. В результате увеличивается высвобождение интерферона альфа (англ. interferon alfa, IFN-α) последними через CD40/CD40L. Истощение пула тромбоцитов на мышиных моделях СКВ улучшало течение заболевания, трансфузия же их усугубляла его [35]. Взаимодействие нейтрофилов и тромбоцитов через CD40 регулируется по принципу положительной обратной связи, а именно, выделение супероксида и активных форм кислорода лейкоцитами повышается на фоне стимуляции секреции CD40L тромбоцитами [36].

Еще одним важным регуляторным цитокином является IL-1β. Лейкоциты являются основным источником этого цитокина в организме человека. Тромбоциты повышают экспрессию лейкоцитами данного цитокина, а экспрессия Р-селектина, как было показано, связана с более высокими концентрациями IL-1β и IL-6 после стимуляции ex vivo [37]. На фоне вирусной инфекции тромбоциты высвобождают микровезикулы, заполненные IL-1β, в результате активации NLRP3 (англ. NOD-, LRRand pyrin domain-containing protein 3; NOD-, LPR и пирин домен содержащий протеин 3) реактивными формами кислорода [38].

Помимо провоспалительного влияния тромбоцитов на клетки иммунитета, они также обладают и противовоспалительными эффектами за счет прямого взаимодействия или высвобождения различных факторов. В эксперименте было показано, что тромбоциты и их производные снижают концентрацию провоспалительных цитокинов, таких как фактор некроза опухоли альфа (англ. tumor necrosis factor-α, TNF-α) и IL-6. Истощение пула тромбоцитов приводило к увеличению смертности и полиорганной недостаточности на мышиных моделях септического шока, и наоборот, введение тромбоцитов ослабляло генерализованный гипериммунный ответ [39]. В другом исследовании было показано, что добавление тромбоцитов в культуру мононуклеарных клеток приводило к подавлению продукции IL-6 и TNF-α и более высокой продукции IL-10 после стимуляции PAMPs различного происхождения [40].

Тромбоциты и внеклеточные ловушки нейтрофилов / Platelets and neutrophil extracellular traps

Внеклеточные ловушки нейтрофилов (англ. neutrophil extracellular traps, NETs) представлены внеклеточной ДНК и цитоплазматическими и ядерными белками, выбрасываемыми нейтрофилами при активации во внеклеточное пространство [41]. После первоначального открытия этого процесса было показано, что тромбоциты играют фундаментальную роль в формировании этих структур при сепсисе путем изначального определения TLR4 лигандов и запуская адгезию нейтрофилов [42]. Позже стало известно, что этот механизм взаимодействия зависит от αLβ2-интегрина LFA-1 (англ. lymphocyte function-associated antigen 1; антиген-1, связанный с функцией лимфоцитов; CD11a/CD18) [43]. Микровезикулы тромбоцитов, богатые HMGB1, также стимулируют нейтрофилы к синтезу NETs [44]. Наряду с этим, взаимодействие тромбоцитарного гликопротеина Ib (англ. glycoprotein Ib, GPIb) с нейтрофильным CD18, высвобождение фактора фон Виллебранда (англ. von Willebrand factor, vWF) и CXCL4 способствуют нетозу (процессу формирования NETs нейтрофилами). При этом интенсивность нетоза зависит от продукции TXA2, и, соответственно, может подавляться под влиянием ацетилсалициловой кислоты и простациклина [45].

Тромбоциты и вирусы / Platelets and viruses

Противовирусный иммунитет традиционно связывают с работой лейкоцитов. Однако при различных вирусных инфекциях, включая вирус Денге [46], вирус иммунодефицита человека (ВИЧ), вирус гриппа [47] и SARS-CoV-2 [48], отмечено повышение активности тромбоцитов. Основным противовирусным эффектом тромбоцитов является секвестрация вирусных частиц, что ограничивает распространение вируса. У пациентов с ВИЧ доказано, что тромбоциты связывают и эндоцитируют вирионы ВИЧ, способствуя выведению вирусных частиц из циркуляции [49]. Во время активации тромбоцитов α-гранулы доставляются на поверхность клетки и экстернализируются, таким образом высвобождая широкий спектр биоактивных молекул, включая PF4 (также называемый хемокин CXCL4). Помимо того, что он является важным агентом хемотаксиса лейкоцитов, PF4 обладает прямой противовирусной активностью [50]. Тромбоциты также выделяют противомикробные протеины, такие как PD1–PD4 (англ. programmed cell death proteins 1–4; белки запрограммированной клеточной смерти 1–4), которые обладают противовирусной активностью против вируса коровьей оспы [51]. Недавние исследования показали, что тромбоциты содержат вирусспецифический иммуноглобулин G (IgG), способный потенциально нейтрализовать in vitro и in vivo цитомегаловирус (ЦМВ) и вирус гриппа А [52]. IgG локализуется в α-гранулах [53]. Мегакариоциты способны поглощать IgG, где они хранятся в α-гранулах с последующей секрецией зрелыми тромбоцитами. При этом IgG, высвобождаемый из тромбоцитов, более эффективен в отношении нейтрализации вируса по сравнению с IgG плазмы [52].

Тромбоциты также способны управлять местным иммунным ответом на инфекцию. Цитомегаловирус распознается тромбоцитарным TLR2, что приводит к дегрануляции тромбоцитов, хемотаксису лейкоцитов и образованию агрегатов тромбоцитов с нейтрофилами, моноцитами, В-клетками, Т-клетками и дендритными клетками [54]. Благодаря этим взаимодействиям тромбоцитов и лейкоцитов, тромбоциты выставляют вирусные антигены лейкоцитам через главный комплекс гистосовместимости класса I [55], а также стимулирующие сигналы к антигенпрезентирующим клеткам [56]. Аналогичные реакции были отмечены при лихорадке Денге [57].

В ответ на противовирусный иммунитет тромбоцитов вирусы развили механизмы уклонения от распознавания тромбоцитов. Вирусы взаимодействуют с рецепторами тромбоцитов на их поверхности. Вирус Денге и ВИЧ связываются с поверхностными лектиновыми рецепторами и специфичными для дендритных клеток межклеточными молекулами адгезии-3захватывающими нонинтегринами (англ. dendritic cell-specific intercellular adhesion molecule-3-grabbing nonintegrin, DC-SIGN) на тромбоцитах [58]. Такие взаимодействия приводят к интернализации вирусных частиц, после чего такие вирусы как ВИЧ, ЦМВ и вирус гепатита С (ВГС) могут продолжать размножаться как внутри мегакариоцитов, так и в тромбоцитах [58]. Кроме использования тромбоцитов в качестве места репликации, некоторые вирусы используют циркулирующие тромбоциты в качестве клеточных носителей, чтобы избежать иммунного обнаружения. К таким вирусам относят вирус гриппа [59] и ВИЧ, которые по существу образуют латентные вирусные резервуары. Считается, что ВГС использует циркулирующие тромбоциты для транспорта в печень, где взаимодействия тромбоцитов и гепатоцитов продлевают длительность персистенции вируса [60].

Тромбоцитопения при вирусной инфекции / Thrombocytopenia in viral infection

Тромбоцитопения является общим признаком при тяжелом течении различных вирусных инфекций. Механизмы ее развития следующие:

  1. нейраминидазная активность вируса гриппа и простого герпеса сокращает продолжительность жизни тромбоцитов, обеспечивая их быстрый клиренс в печени и селезенке [61];
  2. активность нейраминидазы изменяет плоидность мегакариоцитов, морфологию и размер будущих тромбоцитов [62];
  3. вирусы простого герпеса (ВПГ), влияя на активность тромбопоэтина, уменьшают формирование колонии мегакариоцитов [63], снижают их выживаемость и дифференцировку [64];
  4. нарушение дифференцировки мегакариоцитов происходит и за счет изменения экспрессии цитокинов в костном мозге, в частности, при инфицировании вирусом Денге [65];
  5. при инфицировании вирусом Денге, ВИЧ и другими вирусами отмечается нарушение развития мегакариоцитов, активации тромбоцитов, митохондриальная дисфункция, снижение клеточной целостности и усиление апоптоза [66][67].

Нарушения процессов агрегации и активации тромбоцитов при вирусной инфекции / Impaired platelet aggregation and activation in viral infection

Вирусная инфекция также оказывает влияние и на функцию тромбоцитов [68].

  1. Вирус Коксаки В (CVB) связывается и проникает в тромбоциты благодаря Коксаки адренорецептору. CVB не может реплицироваться внутри тромбоцитов, зато он модулирует активность и усиливает высвобождение Р-селектина и эффекты фосфатидилсерина, что в совокупности способствуют взаимодействиям тромбоцитов с лейкоцитами, приводит к разрушению тромбоцитов и тромбоцитопении [69].
  2. Вирус коровьей оспы также проникает в тромбоциты [68]. В исследованиях in vitro было продемонстрировано снижение агрегации тромбоцитов и усиление высвобождения ими серотонина после инфицирования. В исследованиях in vivo было показано, что заражение вирусом коровьей оспы приводит к усилению внутрисосудистого свертывания [70], связанного с усиленным ответом тромбоцитов. Это несоответствие может указывать на то, что вирус коровьей оспы может влиять на функцию эндотелия, что имеет решающее значение для регуляции функций тромбоцитов in vivo [71].
  3. Повышенная активация тромбоцитов при инфицировании вирусами гриппа частично связана с высвобождением моноцитами цитокинов, которые далее активируют тромбоциты [72].
  4. Иммунный ответ на инфицирование ВГС, ВИЧ, ЦМВ и короновирусами заключается в выработке нейтрализующих антител против вирусных гликопротеинов. Антитела к гликопротеинам перекрестно реагируют с интегринами тромбоцитов, приводя к развитию антителозависимой тромбоцитопении [73].
  5. Повреждая эндотелий, вирусы косвенно влияют на функцию тромбоцитов. Например, вирус Денге поражает эндотелиальные клетки, способствуя активации эндотелия, эндотелиально-тромбоцитарных взаимодействий и повышая проницаемость сосудов [38][74]. Нарушение целостности сосудов у инфицированных вирусом способствует активации тромбоцитов и может представлять собой один из механизмов усиленного клиренса тромбоцитов.
  6. При хронической вирусной инфекции, такой как ВИЧ, пациенты нуждаются в постоянном подавлении репликации вируса. Исследования показали, что некоторые антиретровирусные препараты повышают риск инфаркта миокарда [75] в связи с повышением активации и агрегации тромбоцитов [76]. Эти эффекты дополнительно усиливает влияние на эндотелий антиретровирусной терапии [77].

Таким образом, как сама вирусная инфекция, так и противовирусные препараты способны оказывать влияние на активацию тромбоцитов.

Тромбоциты и SARS-CoV-2 / Platelets and SARS-CoV-2

Параллельная активация воспаления и коагуляции в сочетании с привлечением и активацией большого количества иммунных клеток в участки инфицирования получила название «иммунотромбоз» и была впервые описана B. Engelmann и S. Massberg в 2013 г. [78].

COVID-19 – это вирусная инфекция с полиморфной клинической картиной, которую определяет амплитуда иммунотромбоза и степень повреждения тканей. Исследования показывают, что коагулопатия при COVID-19 представляет собой сочетание локального потребления тромбоцитов в легких, диссеминированного внутрисосудистого свертывания (ДВС) и тромботической микроангиопатии.

Тяжелое воспаление легких, обструктивный микрососудистый иммунотромбоз легких пациентов с COVID-19 приводят к легочному тромбозу/тромбоэмболии, лежащим в основе полиорганной недостаточности и смертности [79].

Информационная РНК SARS-CoV-2 обнаруживается в тромбоцитах пациентов с COVID-19 [80]. До конца не ясно, проникает ли SARS-CoV-2 в тромбоциты посредством рецептор-опосредованного эндоцитоза. SARS-CoV-2 проникает в клетки хозяина путем связывания с рецептором ангиотензинпревращающего фермента 2 (англ. angiotensin converting enzyme 2, ACE2) [81]. Некоторые исследования показали, что ни ACE2, ни белок не обнаружены в тромбоцитах [82]. В других исследованиях сообщается об экспрессии ACE2 в тромбоцитах, которая способствует прямой активации тромбоцитов SARS-CoV-2 [83]. Причина этого несоответствия, возможно, связана с различиями в приготовлении отмытых тромбоцитов или генетическими различиями между популяциями.

Активация тромбоцитов является одним из звеньев патофизиологии COVID-19. У пациентов с COVID-19 отмечают аномальную морфологию тромбоцитов, с наличием крупных, гиперхромных и вакуолизированных тромбоцитов [84]. В исследовании было показало, что у пациентов с COVID-19 активность тромбоцитов повышена по сравнению с контрольными группами [85]. Более высокие концентрации тромбоцитарно-моноцитарных и тромбоцитарно-гранулоцитарных агрегатов, свидетельствующие о повышенной системной активации тромбоцитов, наблюдаются у пациентов с COVID-19-ассоциированной пневмонией [86]. Тромбоциты в условиях COVID-19 способствуют росту концентрации фибриногена, фактора фон Виллебранда и фактора XII, что в результате способствует усилению XII-зависимой коагуляции [86]. Тромбоциты пациентов с тяжелой формой COVID-19 вызывают экспрессию тканевого фактора in vivo [66].

Особый интерес представляют различные циркулирующие биомаркеры, такие как фибрин/фибриноген, D-димер, P-селектин, мультимеры фактора фон Виллебранда, растворимый тромбомодулин и тканевой фактор. Основой активности их как биомаркеров являются их рецепторы и сигнальные пути на эндотелиальных клетках, тромбоцитах, моноцитах и эритроцитах. Остается открытым вопрос о том, непосредственно ли на систему гемостаза действует вирус или гемостатическая активация является вторичной по отношению к воспалительному ответу.

В настоящее время нет единого мнения в отношении экспрессии ACE2 на тромбоцитах. Связывается ли SARS-CoV-2 с тромбоцитами напрямую через ACE2 или существуют альтернативные пути? Исследования в этом направлении могут открыть механизмы гиперкоагуляции при цитокиновом шторме. Борьба с цитокиновым штормом при тяжелом течении COVID-19 может включать в том числе и антитромбоцитарную терапию [87]. Было показано, что при приеме ацетилсалициловой кислоты снижалась необходимость в искусственной вентиляции легких, частота госпитализа-ции в реанимационное отделение и внутрибольничная смертность у госпитализированных с COVID-19 пациентов [88]. Более глубокое понимание вклада тромбоцитов в противовирусный иммунитет повысит эффективность терапии вирусных инфекций (рис. 1).

Рисунок 1. Тромбоциты и COVID-19 [рисунок авторов].
Примечание: ACE2 – рецептор ангиотензинпревращающего фермента 2 на тромбоците.

Figure 1. Platelets and COVID-19 [drawn by authors].
Note: ACE2 – angiotensin-converting enzyme 2 receptors on platelet.

Заключение / Conclusion

Ранее известные как звенья системы гемостаза, тромбоциты приобрели иное значение в последние годы благодаря результатам исследований, которые поместили их в один ряд с важнейшими игроками иммунного ответа.

Тромбоциты являются участниками противоинфекционного иммунитета, патогенеза аутоиммунных и хронических воспалительных заболеваний. Растущий интерес к тромбоцитам связан еще и с тем, что они могут явиться новой мишенью для разработки противовоспалительной терапии с многообещающими результатами.

Список литературы

1. Li R., Hoffmeister K.M., Falet H. Glycans and the platelet life cycle. Platelets. 2016;27(6):505–11. https://doi.org/10.3109/09537104.2016.1171304.

2. Garcia-Souza L.F., Oliveira M.F. Mitochondria: biological roles in platelet physiology and pathology. Int J Biochem Cell Biol. 2014;50:156–60. https://doi.org/10.1016/j.biocel.2014.02.015.

3. Junt T., Schulze H., Chen Z. et al. Dynamic visualization of thrombopoiesis within bone marrow. Science. 2007;317(5845):1767–70. https://doi.org/10.1126/science.1146304.

4. Lefrancais E., Ortiz-Munoz G., Caudrillier A. et al. The lung is a site of platelet biogenesis and a reservoir for haematopoietic progenitors. Nature. 2017;544(7648):105–9. https://doi.org/10.1038/nature21706.

5. Liu X., Gorzelanny C., Schneider S.W. Platelets in skin autoimmune diseases. Front Immunol. 2019;10:1453. https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.01453.

6. Haemmerle M., Stone R.L., Menter D.G. et al. The platelet lifeline to cancer: challenges and opportunities. Cancer Cell. 2018;33(6):965–83. https://doi.org/10.1016/j.ccell.2018.03.002.

7. Middleton E., Rondina M.T. Platelets in infectious disease. Hematology. 2016;2016(1):256–61. https://doi.org/10.1182/asheducation-2016.1.256.

8. Sharda A., Flaumenhaft R. The life cycle of platelet granules. F1000Research. 2018;7:236. https://doi.org/10.12688/f1000research.13283.1.

9. Kuravi S.J., Harrison P., Rainger G.E., Nash G.B. Ability of plateletderived extracellular vesicles to promote neutrophil-endothelial cell interactions. Inflammation. 2019;42(1):290–305. https://doi.org/10.1007/s10753-018-0893-5.

10. Ribeiro L.S., Migliari Branco L., Franklin B.S. Regulation of innate immune responses by platelets. Front Immunol. 2019;10:1320. https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.01320.

11. Liu J., van Sommeren S., Huang H. et al. Association analyses identify 38 susceptibility loci for inflammatory bowel disease and highlight shared genetic risk across populations. Nat Genet. 2015;47(979):86. https://doi.org/10.1038/ng.3359.

12. Riaz A.H., Tasma B.E., Woodman M.E. et al. Human platelets efficiently kill IgG-opsonized E. coli. FEMS Immunol Med Microbiol. 2012;65(1):78– 83. https://doi.org/10.1111/j.1574-695X.2012.00945.x.

13. Martel C., Cointe S., Maurice P. et al. Requirements for membrane attack complex formation and anaphylatoxins binding to collagen-activated platelets. PLoS One. 2011;6(4):e18812. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0018812.

14. Clemetson K.J., Clemetson J.M., Proudfoot A.E. et al. Functional expression of CCR1, CCR3, CCR4, and CXCR4 chemokine receptors on human platelets. Blood. 2000;96(13):4046–54.

15. D'Atri L.P., Etulain J., Rivadeneyra L. et al. Expression and functionality of Toll-like receptor 3 in the megakaryocytic lineage. J Thromb Haemost. 2015;13(5):839–50. https://doi.org/10.1111/jth.12842.

16. Hamzeh-Cognasse H., Berthelot P., Tardy B. et al. Platelet toll-like receptors are crucial sensors of infectious danger moieties. Platelets. 2018;29(6):533–40. https://doi.org/10.1080/09537104.2018.1445842.

17. Sreeramkumar V., Adrover J.M., Ballesteros I. et al. Neutrophils scan for activated platelets to initiate inflammation. Science. 2014;346(6214):1234–8. https://doi.org/10.1126/science.1256478.

18. Rossaint J., Kuhne K., Skupski J. et al. Directed transport of neutrophilderived extracellular vesicles enables platelet-mediated innate immune response. Nat Commun. 2016;7:13464. https://doi.org/10.1038/ncomms13464.

19. Duerschmied D., Suidan G.L., Demers M. et al. Platelet serotonin promotes the recruitment of neutrophils to sites of acute inflammation in mice. Blood. 2013;121(6):1008–15. https://doi.org/10.1182/blood-2012-06-437392.

20. Slaba I., Wang J., Kolaczkowska E. et al. Imaging the dynamic plateletneutrophil response in sterile liver injury and repair in mice. Hepatology. 2015;62(5):1593–605. https://doi.org/10.1002/hep.28003.

21. Zuchtriegel G., Uhl B., Puhr-Westerheide D. et al. Platelets guide leukocytes to their sites of extravasation. PLoS Biol. 2016;14(5):e1002459. https://doi.org/10.1371/journal.pbio.1002459.

22. Alard J-.E., Ortega-Gomez A., Wichapong K. et al. Recruitment of classical monocytes can be inhibited by disturbing heteromers of neutrophil HNP1 and platelet CCL5. Sci Transl Med. 2015;7(317):317ra196. https://doi.org/10.1126/scitranslmed.aad5330.

23. Léon C., Ravanat C., Freund M. et al. Differential involvement of the P2Y1 and P2Y12 receptors in platelet procoagulant activity. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2003;23(10):1941–7. https://doi.org/10.1161/01.ATV.0000092127.16125.E6.

24. Liverani E., Rico M.C., Yaratha L. et al. LPS-induced systemic inflammation is more severe in P2Y12 null mice. J Leukoc Biol. 2014;95(2):313–23. https://doi.org/10.1189/jlb.1012518.

25. Vogel S., Bodenstein R., Chen Q. et al. Platelet-derived HMGB1 is a critical mediator of thrombosis. J Clin Invest. 2015;125(12):4638–54. https://doi.org/10.1172/JCI81660.

26. Fox J.M., Kausar F., Day A. et al. CXCL4/Platelet Factor 4 is an agonist of CCR1 and drives human monocyte migration. Sci Rep. 2018;8(1):9466. https://doi.org/10.1038/s41598-018-27710-9.

27. Gaertner F., Ahmad Z., Rosenberger G. et al. Migrating platelets are mechano-scavengers that collect and bundle bacteria. Cell. 2017;171(6):1368–1382.e23. https://doi.org/10.1016/j.cell.2017.11.001.

28. Assinger A., Laky M., Schabbauer G. et al. Efficient phagocytosis of periodontopathogens by neutrophils requires plasma factors, platelets and TLR2. J Thromb Haemost. 2011;9(4):799–809. https://doi.org/10.1111/j.1538-7836.2011.04193.x.

29. Wuescher L.M., Takashima A., Worth R.G. A novel conditional platelet depletion mouse model reveals the importance of platelets in protection against Staphylococcus aureus bacteremia. J Thromb Haemost. 2015;13(2):303–13. https://doi.org/10.1111/jth.12795.

30. Hurley S.M., Kahn F., Nordenfelt P. et al. Platelet-dependent neutrophil function is dysregulated by M protein from Streptococcus pyogenes. Infect Immun. 2015;83(9):3515–25. https://doi.org/10.1128/IAI.00508-15.

31. Kho S., Barber B.E., Johar E. et al. Platelets kill circulating parasites of all major Plasmodium species in human malaria. Blood. 2018;132(12):1332–44. https://doi.org/10.1182/blood-2018-05-849307.

32. Laffont B., Corduan A., Rousseau M. et al. Platelet microparticles reprogram macrophage gene expression and function. Thromb Haemost. 2016;115(2):311–23. https://doi.org/10.1160/TH15-05-0389.

33. Weyrich A.S., Elstad M.R., McEver R.P. et al. Activated platelets signal chemokine synthesis by human monocytes. J Clin Invest. 1996;97(6):1525–34. https://doi.org/10.1172/JCI118575.

34. Hwaiz R., Rahman M., Syk I. et al. Rac1-dependent secretion of plateletderived CCL5 regulates neutrophil recruitment via activation of alveolar macrophages in septic lung injury. J Leukoc Biol. 2015;97(5):975–84. https://doi.org/10.1189/jlb.4A1214-603R.

35. Duffau P., Seneschal J., Nicco C. et al. Platelet CD154 potentiates interferon-α secretion by plasmacytoid dendritic cells in systemic lupus erythematosus. Sci Transl Med. 2010;2(47):47ra63. https://doi.org/10.1126/scitranslmed.3001001.

36. Vanichakarn P., Blair P., Wu C. et al. Neutrophil CD40 enhances plateletmediated inflammation. Thromb Res. 2008;122(3):346–58. https://doi.org/10.1016/j.thromres.2007.12.019.

37. Tunjungputri R.N., Li Y., de Groot P.G. et al. The inter-relationship of platelets with interleukin-1β-mediated inflammation in humans. Thromb Haemost. 2018;118(12):2112–25. https://doi.org/10.1055/s-0038-1675603.

38. Hottz E.D., Lopes J.F., Freitas C. et al. Platelets mediate increased endothelium permeability in dengue through NLRP3-inflammasome activation. Blood. 2013;122(20):3405–14. https://doi.org/10.1182/blood-2013-05-504449.

39. Xiang B., Zhang G., Guo L. et al. Platelets protect from septic shock by inhibiting macrophage-dependent inflammation via the cyclooxygenase 1 signalling pathway. Nat Commun. 2013;4:2657. https://doi.org/10.1038/ncomms3657.

40. Hally K.E., La Flamme A.C., Harding S.A., Larsen P.D. Platelets regulate leucocyte responses to Toll-like receptor stimulation. Clin Transl Immunology. 2018;7(7):e1036. https://doi.org/10.1002/cti2.1036.

41. Ascherio A., Munger K.L. Environmental risk factors for multiple sclerosis. Part I: the role of infection. Ann Neurol. 2007;61(4):288–99. https://doi.org/10.1002/ana.21117.

42. Clark S.R., Ma A.C., Tavener S.A. et al. Platelet TLR4 activates neutrophil extracellular traps to ensnare bacteria in septic blood. Nat Med. 2007;13(4):463–9. https://doi.org/10.1038/nm1565.

43. McDonald B., Urrutia R., Yipp B.G. et al. Intravascular neutrophil extracellular traps capture bacteria from the bloodstream during sepsis. Cell Host Microbe. 2012;12(3):324–33. https://doi.org/10.1016/j.chom.2012.06.011.

44. Zhou H., Deng M., Liu Y. et al. Platelet HMGB1 is required for efficient bacterial clearance in intra-abdominal bacterial sepsis in mice. Blood Adv. 2018;2(6):638–48. https://doi.org/10.1182/bloodadvances.2017011817.

45. Carestia A., Kaufman T., Schattner M. Platelets: new bricks in the building of neutrophil extracellular traps. Front Immunol. 2016;7:271. https://doi.org/10.3389/fimmu.2016.00271.

46. Ojha A., Nandi D., Batra H. et al. Platelet activation determines the severity of thrombocytopenia in dengue infection. Sci Rep. 2017;7:41697. https://doi.org/10.1038/srep41697.

47. Mayne E., Funderburg N.T., Sieg S.F. et al. Increased platelet and microparticle activation in HIV infection: upregulation of P-selectin and tissue factor expression. J Acquir Immune Defic Syndr. 2012;59(4):340– 6. https://doi.org/10.1097/QAI.0b013e3182439355.

48. Ackermann M., Verleden S.E., Kuehnel M. et al. Pulmonary vascular endothelialitis, thrombosis, and angiogenesis in Covid-19. N Engl J Med. 2020;383(2):120–8. https://doi.org/10.1056/NEJMoa2015432.

49. Banerjee M., Huang Y., Joshi S. et al. Platelets endocytose viral particles and are activated via TLR (toll-like receptor) signaling. Arterioscl Thromb Vasc Biol. 2020;40(7):1635–50. https://doi.org/10.1161/ATVBAHA.120.314180.

50. Parker Z.F., Rux A.H., Riblett A.M. et al. Platelet factor 4 inhibits and enhances HIV-1 infection in a concentration-dependent manner by modulating viral attachment. AIDS Res Hum Retroviruses. 2016;32(7):705–17. https://doi.org/10.1089/AID.2015.0344.

51. Mohan K.V., Rao S.S., Atreya C.D. Antiviral activity of selected antimicrobial peptides against vaccinia virus. Antiviral Res. 2010;86(3):306–11. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2010.03.012.

52. Schrottmaier W.C., Salzmann M., Badrnya S. et al. Platelets mediate serological memory to neutralize viruses in vitro and in vivo. Blood Adv. 2020;4(16):3971–6. https://doi.org/10.1182/bloodadvances.2020001786.

53. George J.N., Saucerman S., Levine S.P. et al. Immunoglobulin G is a platelet alpha granule-secreted protein. J Clin Invest. 1985;76(5):2020–5. https://doi.org/10.1172/JCI112203.

54. Assinger A., Kral J.B., Yaiw K.C. et al. Human Cytomegalovirus–platelet interaction triggers toll-like receptor 2–dependent proinflammatory and proangiogenic responses. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2014;34(4):801–9. https://doi.org/10.1161/ATVBAHA.114.303287.

55. Chapman L.M., Aggrey A.A., Field D.J. et al. Platelets present antigen in the context of MHC class I. J Immunol. 2012;189(2):916–23. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1200580.

56. Czapiga M., Kirk A.D., Lekstrom-Himes J. Platelets deliver costimulatory signals to antigen-presenting cells: a potential bridge between injury and immune activation. Exp Hematol. 2004;32(2):135–9. https://doi.org/10.1016/j.exphem.2003.11.004.

57. Barbosa-Lima G., Hottz E.D., de Assis E.F. et al. Dengue virus-activated platelets modulate monocyte immunometabolic response through lipid droplet biogenesis and cytokine signaling. J Leukoc Biol. 2020;108(4):1293–306. https://doi.org/10.1002/JLB.4MA0620-658R.

58. Chaipan C., Soilleux E.J., Simpson P. et al. DC-SIGN and CLEC-2 mediate human immunodeficiency virus type 1 capture by platelets. J Virol. 2006;80(18):8951–60. https://doi.org/10.1128/JVI.00136-06.

59. Terada H., Baldini M., Ebbe S., Madoff M.A. Interaction of influenza virus with blood platelets. Blood. 1966;28(2):213–28.

60. Zahn A., Jennings N., Ouwehand W.H., Allain J.-P. Hepatitis C virus interacts with human platelet glycoprotein VI. J Gen Virol. 2006;87(Pt 8):2243–51. https://doi.org/10.1099/vir.0.81826-0.

61. Sorensen A.L., Rumjantseva V., Nayeb-Hashemi S. et al. Role of sialic acid for platelet life span: exposure of β-galactose results in the rapid clearance of platelets from the circulation by asialoglycoprotein receptor– expressing liver macrophages and hepatocytes. Blood. 2009;114(8):1645–54. https://doi.org/10.1182/blood-2009-01-199414.

62. Stenberg P.E., Levin J., Baker G. et al. Neuraminidase-induced thrombocytopenia in mice: Effects on thrombopoiesis. J Cell Physiol. 1991;147(1):7–16. https://doi.org/10.1002/jcp.1041470103.

63. Isomura H., Yoshida M., Namba H. et al. Suppressive effects of human herpesvirus-6 on thrombopoietin-inducible megakaryocytic colony formation in vitro. J Gen Virol. 2000;81(Pt 3):663–73. https://doi.org/10.1099/0022-1317-81-3-663.

64. Gonelli A., Mirandola P., Grill V. et al. Human herpesvirus 7 infection impairs the survival/differentiation of megakaryocytic cells. Haematologica. 2002;87(11):1223–5.

65. Zapata J.C., Cox D., Salvato M.S. The role of platelets in the pathogenesis of viral hemorrhagic fevers. PLoS Negl Trop Dis. 2014;8(6):e2858. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0002858.

66. Hottz E.D., Oliveira M.F., Nunes P.C. et al. Dengue induces platelet activation, mitochondrial dysfunction and cell death through mechanisms that involve DC-SIGN and caspases. J Thromb Haemost. 2013;11(5):951–62. https://doi.org/10.1111/jth.12178.

67. Pastori D., Esposito A., Carnevale R. et al. HIV-1 induces in vivo platelet activation by enhancing platelet NOX2 activity. J Infect. 2015;70(6):651– 8. https://doi.org/10.1016/j.jinf.2015.01.005.

68. Bik T., Sarov I., Livne A. Interaction between vaccinia virus and human blood platelets. Blood. 1982;59(3):482–7.

69. Negrotto S., de Giusti J.C., Rivadeneyra L. et al. Platelets interact with coxsackieviruses B and have a critical role in the pathogenesis of virusinduced myocarditis. J Thromb Haemost. 2015;13(2):271–82. https://doi.org/10.1111/jth.12782.

70. Sottnek H.M., Campbell W.G., Cassel W.A. The pathogenesis of Vaccinia virus toxicity. II. An electron microscopic study. Lab Invest. 1975;33(5):522–32.

71. Moore C., Tymvios C., Michael E. Functional regulation of vascular and platelet activity during thrombosis by nitric oxide and endothelial nitric oxide synthase. Thromb Haemost. 2010;104(2):342–9. https://doi.org/10.1160/TH09-11-0764.

72. Bouwman J., Visseren F., Bosch M. et al. Procoagulant and inflammatory response of virus-infected monocytes. Eur J Clin Iinvest. 2002;32(10):759–66. https://doi.org/10.1046/j.1365-2362.2002.01041.x.

73. Goeijenbier M., van Wissen M., van De Weg C. et al. Review: Viral infections and mechanisms of thrombosis and bleeding. J Med Virol. 2012;84(10):1680–96. https://doi.org/10.1002/jmv.23354.

74. Gavrilovskaya I.N., Gorbunova E.E., Mackow E.R. Pathogenic hantaviruses direct the adherence of quiescent platelets to infected endothelial cells. J Virol. 2010;84(9):4832–9. https://doi.org/10.1128/JVI.02405-09.

75. Sabin C.A., Reiss P., Ryom L. et al. Is there continued evidence for an association between abacavir usage and myocardial infarction risk in individuals with HIV? A cohort collaboration. BMC Med. 2016;14:61. https://doi.org/10.1186/s12916-016-0588-4.

76. Taylor K.A., Smyth E., Rauzi F. et al. Pharmacological impact of antiretroviral therapy on platelet function to investigate human immunodeficiency virus-associated cardiovascular risk. Br J Pharmacol. 2019;176(7):879–89. https://doi.org/10.1111/bph.14589.

77. Khawaja A.A., Taylor K.A., Lovell A.O. et al. HIV antivirals affect endothelial activation and endothelial-platelet crosstalk. Circ Res. 2020;127(11):1365–80. https://doi.org/10.1161/CIRCRESAHA.119.316477.

78. Engelmann B., Massberg S. Thrombosis as an intravascular effector of innate immunity. Nat Rev Immunol. 2013;13(1):34–45. https://doi.org/10.1038/nri3345.

79. Gu S.X., Tyagi T., Jain K. et al. Thrombocytopathy and endotheliopathy: crucial contributors to COVID-19 thromboinflammation. Nat Rev Cardiol. 2021;18(3):194–209. https://doi.org/10.1038/s41569-020-00469-1.

80. Campbell R.A., Boilard E., Rondina M.T. Is there a role for the ACE2 receptor in SARS-CoV-2 interactions with platelets? J Thromb Haemost. 2021;19(1):46–50. https://doi.org/10.1111/jth.15156.

81. Hoffmann M., Kleine-Weber H., Schroeder S. et al. SARS-CoV-2 cell entry depends on ACE2 and TMPRSS2 and is blocked by a clinically proven protease inhibitor. Cell. 2020;181(2):271–80.e8. https://doi.org/10.1016/j.cell.2020.02.052.

82. Manne B.K., Denorme F., Middleton E.A. et al. Platelet gene expression and function in patients with COVID-19. Blood. 2020;136(11):1317–29. https://doi.org/10.1182/blood.2020007214.

83. Zhang S., Liu Y., Wang X. et al. SARS-CoV-2 binds platelet ACE2 to enhance thrombosis in COVID-19. J Hematol Oncol. 2020;13:120. https://doi.org/10.1186/s13045-020-00954-7.

84. Zini G., Bellesi S., Ramundo F., d'Onofrio G. Morphological anomalies of circulating blood cells in COVID-19. Am J Hematol. 2020;95(7):870–2. https://doi.org/10.1002/ajh.25824.

85. Zaid Y., Guessous F., Puhm F. et al. Platelet reactivity to thrombin differs between patients with COVID-19 and those with ARDS unrelated to COVID-19. Blood Adv. 2021;5(3):635–9. https://doi.org/10.1182/bloodadvances.2020003513.

86. Taus F., Salvagno G., Cane S. et al. Platelets promote thromboinflammation in SARS-CoV-2 pneumonia. Arterioscl Thromb Vasc Biol. 2020;40(12):2975–89. https://doi.org/10.1161/ATVBAHA.120.315175.

87. Mehta P., McAuley D.F., Brown M. et al. COVID-19: consider cytokine storm syndromes and immunosuppression. Lancet. 2020;395(10229):1033–4. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(20)30628-0.

88. Chow J.H., Khanna A.K., Kethireddy S. et al. Aspirin use is associated with decreased mechanical ventilation, intensive care unit admission, and in-hospital mortality in hospitalized patients with coronavirus disease 2019. Anesth Analg. 2021;132(4):930–41. https://doi.org/10.1213/ANE.0000000000005292.


Об авторах

Е. В. Слуханчук
ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет); ФГБНУ «Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского»
Россия

Слуханчук Екатерина Викторовна – к.м.н., доцент кафедры акушерства и гинекологии Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова; врач акушер-гинеколог отделения абдоминальной хирургии и онкологии 2

119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4
119991 Москва, Абрикосовский пер., д. 2



В. О. Бицадзе
ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет)
Россия

Бицадзе Виктория Омаровна – д.м.н., профессор РАН, профессор кафедры акушерства и гинекологии Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова

Scopus Author ID: 6506003478
Researcher ID: F-8409-2017

119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4



Д. Х. Хизроева
ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет)
Россия

Хизроева Джамиля Хизриевна – д.м.н., профессор кафедры акушерства и гинекологии Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова

Scopus Author ID: 57194547147
 Researcher ID: F-8384-2017

119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4



А. Г. Солопова
ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет)
Россия

Солопова Антонина Григорьевна – д.м.н., профессор кафедры акушерства и гинекологии Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова

Scopus Author ID: 6505479504
Researcher ID: Q-1385-2015

119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4



В. И. Цибизова
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Цибизова Валентина Ивановна – к.м.н., врач акушер-гинеколог НИЛ оперативной гинекологии Института перинатологии и педиатрии, врач отделения функциональной ультразвуковой диагностики

197341 Санкт-Петербург, ул. Аккуратова, д. 2



Ф. Якубова
ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет)
Россия

Якубова Фидан – клинический ординатор кафедры акушерства и гинекологии Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова

119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4



Д. Ай
Венский университет
Австрия

Aй Джихан – д.м.н., профессор, клиническое подразделение гематологии и гемостазиологии, медицинское отделение I

Scopus Author ID: 55356863800

1010 Вена, Universitatsring, д. 1



Ж.-К. Гри
ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет); Университет Монпелье
Франция

Гри Жан-Кристоф – д.м.н., профессор кафедры акушерства и гинекологии Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова; профессор гематологии, университет Монпелье

Researcher ID: AAA-2923-2019

119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4
34090 Монпелье, ул. Огюста Бруссоне, д. 163



А. Д. Макацария
ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет)
Россия

Макацария Александр Давидович – д.м.н., профессор, академик РАН, зав. кафедрой акушерства и гинекологии Клинического института детского здоровья имени Н.Ф. Филатова

Scopus Author ID: 57222220144
Researcher ID: M-5660-2016

119991 Москва, ул. Большая Пироговская, д. 2, стр. 4



Рецензия

Для цитирования:


Слуханчук Е.В., Бицадзе В.О., Хизроева Д.Х., Солопова А.Г., Цибизова В.И., Якубова Ф., Ай Д., Гри Ж., Макацария А.Д. Роль тромбоцитов в противовирусном иммунитете. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2022;16(2):204–212. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2022.305

For citation:


Slukhanchuk E.V., Bitsadze V.O., Khizroeva J.Kh., Solopova A.G., Tsibizova V.I., Yakubova F., Ay C., Gris J., Makatsariya A.D. The role of platelets in antiviral immunity. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2022;16(2):204–212. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2022.305

Просмотров: 18994


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.


ISSN 2313-7347 (Print)
ISSN 2500-3194 (Online)