References

akusherstvo

Obstetrics, Gynecology and Reproduction

Акушерство, Гинекология и Репродукция

2313-73472500-3194

IRBIS LLC

10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.619

akusherstvo-2431

Research Article

REVIEW ARTICLES

НАУЧНЫЕ ОБЗОРЫ

Fetal systemic inflammatory response syndrome, thromboinflammation and neonatal septic shock: pathogenesis, diagnostics and treatment

Фетальный синдром системного воспалительного ответа, тромбовоспаление и неонатальный септический шок: патогенез, диагностика и лечение

https://orcid.org/0000-0001-8404-1042

Бицадзе

В. О.

Bitsadze

V. O.

Бицадзе Виктория Омаровна, д.м.н., проф., профессор РАН

Scopus Author ID: 6506003478

WoS ResearcherID: F-8409-2017

119048 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Victoria O. Bitsadze, MD, Dr Sci Med, Prof., Professor RAS

Scopus Author ID: 6506003478

WoS ResearcherID: F-8409-2017

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119048

vikabits@mail.ru

https://orcid.org/0000-0002-0725-9686

Хизроева

Д. Х.

Khizroeva

J. Kh.

Хизроева Джамиля Хизриевна, д.м.н., проф.

Scopus Author ID: 57194547147

WoS ResearcherID: F-8384-2017

119048 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Jamilya Kh. Khizroeva, MD, Dr Sci Med, Prof.

Scopus Author ID: 57194547147

WoS ResearcherID: F-8384-2017

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119048

https://orcid.org/0000-0002-3628-0804

Третьякова

М. В.

Tretyakova

M. V.

Третьякова Мария Владимировна, к.м.н.

119048 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Maria V. Tretyakova, MD, PhD

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119048

https://orcid.org/0000-0002-2541-3843

Макацария

Н. А.

Makatsariya

N. A.

Макацария Наталия Александровна, к.м.н.

WoS ResearcherID: F-8406-2017

119048 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Nataliya A. Makatsariya, MD, PhD

WoS ResearcherID: F-8406-2017

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119048

https://orcid.org/0000-0002-7567-6043

Габидуллина

Р. И.

Gabidullina

R. I.

Габидуллина Рушанья Исмагиловна, д.м.н., проф.

Scopus Author ID: 57215670415

420012 Казань, ул. Бутлерова, д. 49

Rushania I. Gabidullina, MD, Dr Sci Med, Prof.

Scopus Author ID: 57215670415

49 Butlerov Str., Kazan

https://orcid.org/0000-0002-7040-9683

Мостовой

А. В.

Mostovoi

A. V.

Мостовой Алексей Валерьевич, к.м.н.

Scopus Author ID: 57201723894

Wos ResearcherID: AAR-7908-2021

123423 Москва, ул. Саляма Адиля, д. 2/44

123995 Москва, ул. Баррикадная, д. 2/1, корп. 1

150000 Ярославль, ул. Революционная, д. 5

Aleksei V. Mostovoi, MD, PhD.

Scopus Author ID: 57201723894

Wos ResearcherID: AAR-7908-2021

2/44 Salyama Adilya Str., Moscow 123423

2/1 bldg. 1, Barrikadnaya Str., Moscow 123993

5 Revolutsionnaya Str., Yaroslavl 150000

https://orcid.org/0000-0002-1024-0230

Карпова

А. Л.

Karpova

A. L.

Карпова Анна Львовна, к.м.н.

123423 Москва, ул. Саляма Адиля, д. 2/44

123995 Москва, ул. Баррикадная, д. 2/1, корп. 1

150000 Ярославль, ул. Революционная, д. 5

Anna L. Karpova, MD, PhD

2/44 Salyama Adilya Str., Moscow 123423

2/1 bldg. 1, Barrikadnaya Str., Moscow 123993

5 Revolutsionnaya Str., Yaroslavl 150000

https://orcid.org/0000-0003-4761-5793

Войновский

А. Е.

Voynovskiy

A. E.

Войновский Александр Евгеньевич, д.м.н., проф.

WoS ResearcherID: S-6385-2016

123423 Москва, ул. Саляма Адиля, д. 2/44

Alexander Е. Voynovskiy, MD, Dr Sci Med, Prof.

WoS ResearcherID: S-6385-2016

2/44 Salyama Adilya Str., Moscow 123423

https://orcid.org/0000-0003-0590-8483

Новосатрян

М. Г.

Novosartyan

M. G.

Новосартян Маргарита Геннадиевна, к.м.н.

350089 Краснодар, ул. имени Генерала И.Л. Шифрина, д. 5

Margarita G. Novosartyan, MD, PhD

5 General I.L. Shifrin Str., Krasnodar 5350089

https://orcid.org/0000-0003-2136-1641

Лазарчук

А. В.

Lazarchuk

A. V.

Лазарчук Арина Владимировна

119048 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Arina V. Lazarchuk, MD

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119048

https://orcid.org/0009-0003-5190-4958

Хисамиева

А. Р.

Khisamieva

A. R.

Хисамиева Азалия Рустемовна

119048 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Azaliia R. Khisamieva

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119048

https://orcid.org/0000-0001-6831-8945

Татаринцева

А. Ю.

Tatarintseva

A. Yu.

Татаринцева Алёна Юрьевна

119048 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Alena Yu. Tatarintseva

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119048

https://orcid.org/0000-0002-4509-9281

Воробьев

А. В.

Vorobev

A. V.

Воробьев Александр Викторович, к.м.н.

Scopus Author ID: 57191966265

Wos ResearcherID: F-8804-2017

119048 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Alexander V. Vorobev, MD, PhD

Scopus Author ID: 57191966265

Wos ResearcherID: F-8804-2017

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119048

https://orcid.org/0009-0004-8221-3946

Агасян

К. В.

Agasyan

K. V.

Агасян Каринэ Вигеновна

119048 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Karine V. Agasyan

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119048

Капанадзе

Д. Л.

Kapanadze

D. L.

Капанадзе Дареджан Левановна, к.м.н.

0179 Тбилиси, ул. Узнадзе, д. 78

Daredzhan L. Kapanadze, MD, PhD

78 Uznadze Str., Tbilisi 0179

https://orcid.org/0000-0002-2622-5000

Зайнулина

М. С.

Zainulina

M. S.

Зайнулина Марина Сабировна, д.м.н., проф.

Scopus Author ID: 37076359000

WoS ResearcherID: B-5746-2018

192014 Санкт-Петербург, ул. Маяковского, д. 5

195271 Санкт-Петербург, Кондратьевский проспект, д. 72, лит. А

Marina S. Zainulina, MD, Dr Sci Med, Prof.

Scopus Author ID: 37076359000

WoS ResearcherID: B-5746-2018

5 Mayakovskogo Str., Saint Petersburg 192014

72 lit. A, Kondratievsky Prospekt, Saint Petersburg 195271

https://orcid.org/0000-0003-2976-7128

Серов

В. Н.

Serov

V. N.

Серов Владимир Николаевич, д.м.н., проф., академик РАН

117997 Москва, ул. академика Опарина, д. 4

Vladimir N. Serov, MD, Dr Sci Med, Prof., Academician of RAS

4 Academika Oparina Str., Moscow 117997

https://orcid.org/0000-0002-3367-9844

Блинов

Д. В.

Blinov

D. V.

Блинов Дмитрий Владиславович, к.м.н.

Scopus Author ID: 6701744871

WoS ResearcherID: E-8906-2017

101000 Москва, Лялин переулок, д. 11–13/1

123056 Москва, 2-я Брестская ул., д. 5, с. 1–1а

141551 Московская область, деревня Голубое, Родниковая ул., стр. 6 к. 1

Dmitry V. Blinov, MD, PhD, MBA

Scopus Author ID: 6701744871

WoS ResearcherID: E-8906-2017

11–13/1 Lyalin Pereulok, Moscow 101000

5 bldg. 1–1a, 2-ya Brestskaya Str., Moscow 123056

6 bldg. 1, Rodnikovaya Str., Village Goluboe, Moscow region 141551

https://orcid.org/0000-0002-9899-9910

Гри

Ж.-К.

Gris

Jean-Christophe

Гри Жан-Кристоф, д.м.н., проф.

Scopus Author ID: 7005114260

WoS ResearcherID: AAA-2923-2019

119048 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

34090 Монпелье, ул. Огюста Бруссоне, д. 163

Jean-Christophe Gris, MD, Dr Sci Med, Prof.

Scopus Author ID: 7005114260

WoS ResearcherID: AAA-2923-2019

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119048

163 Rue Auguste Broussonnet, Montpellier 34090

https://orcid.org/0000-0001-8120-4782

Ван Дреден

П.

Van Dreden

Ван Дреден Патрик, д.м.н., проф.

Scopus Author ID: 55915955300

75006 Париж, Улица медицинского факультета, д. 12

Patrick Van Dreden, MD, Dr Sci Med, Prof.

Scopus Author ID: 55915955300

12 Rue de l’École de Médecine, Paris 75006

https://orcid.org/0000-0002-9576-1368

Элалами

И.

Elalamy

Элалами Исмаил, д.м.н., проф.

Scopus Author ID: 7003652413

WoS ResearcherID: AAC-9695-2019

119048 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

75006 Париж, Улица медицинского факультета, д. 12

75020 Париж, Китайская улица, д. 4

Ismail Elalamy, MD, Dr Sci Med, Prof.

Scopus Author ID: 7003652413

WoS ResearcherID: AAC-9695-2019

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119048

12 Rue de l’École de Médecine, Paris 75006

4 Rue de la Chine, Paris 75020

https://orcid.org/0000-0003-2316-6348

Геротзиафас

Г.

Gerotziafas

Геротзиафас Григориос, д.м.н., проф.

119048 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

75006 Париж, Улица медицинского факультета, д. 12

75020 Париж, Китайская улица, д. 4

Grigoriоs Gerotziafas, MD, Dr Sci Med, Prof.

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119048

12 Rue de l’École de Médecine, Paris 75006

4 Rue de la Chine, Paris 75020

https://orcid.org/0000-0001-7415-4633

Макацария

А. Д.

Makatsariya

A. D.

Макацария Александр Давидович, д.м.н., проф., академик РАН

Scopus Author ID: 57222220144

WoS ResearcherID: M-5660-2016

119048 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Alexander D. Makatsariya, MD, Dr Sci Med, Prof., Academician of RAS

Scopus Author ID: 57222220144

WoS ResearcherID: M-5660-2016

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119048

ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет)РоссияSechenov UniversityRussian Federation

ФГБОУ ВО «Казанский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской ФедерацииРоссияKazan State Medical University, Ministry of Health of the Russian FederationRussian Federation

ГБУЗ «Городская клиническая больница № 67 имени Л.А. Ворохобова Департамента здравоохранения города Москвы»; ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Министерства здравоохранения Российской Федерации; ФГБОУ ВО «Ярославский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской ФедерацииРоссияVorokhobov City Clinical Hospital № 67, Moscow Healthcare Department; Russian Medical Academy of Continuous Professional Education, Ministry of Health of the Russian Federation; Yaroslavl State Medical University, Ministry of Health of the Russian FederationRussian Federation

ГБУЗ «Городская клиническая больница № 67 имени Л.А. Ворохобова Департамента здравоохранения города Москвы»РоссияVorokhobov City Clinical Hospital № 67, Moscow Healthcare DepartmentRussian Federation

Клиника ЭКО и Репродукции «Эмбрио»РоссияClinic of IVF and Reproduction «Embryo»Russian Federation

Центр патологии беременности и гемостазаГрузияCenter for Pregnancy Pathology and HemostasisGeorgia

СПб ГБУЗ «Родильный дом № 6 имени профессора В.Ф. Снегирева»; ЧОУ ВО «Санкт-Петербургский медико-социальный институт»РоссияProfessor Snegirev Maternity Hospital No. 6; Saint Petersburg Medical and Social InstituteRussian Federation

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской ФедерацииРоссияAcademician Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of the Russian FederationRussian Federation

Институт Превентивной и Социальной Медицины; АНО ДПО «Московский медико-социальный институт имени Ф.П. Гааза»; ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр медицинской реабилитации и курортологии Федерального медико-биологического агентства»РоссияInstitute for Preventive and Social Medicine; Moscow Haass Medical – Social Institute; Federal Scientific and Clinical Center for Medical Rehabilitation and Balneology, Federal Medical-Biological AgencyRussian Federation

ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет); Университет МонпельеФранцияSechenov University; University of MontpellierFrance

Отдел клинических исследований, Diagnostica Stago Gennevilliers; Медицинский Университет СорбонныФранцияClinical Research Department, Diagnostica Stago Gennevilliers; Medicine Sorbonne UniversityFrance

ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет); Медицинский Университет Сорбонны; Госпиталь ТенонФранцияSechenov University; Medicine Sorbonne University; Hospital TenonFrance

2025

10052025

192250272

Copyright © Bitsadze V.O., Khizroeva J.K., Tretyakova M.V., Makatsariya N.A., Gabidullina R.I., Mostovoi A.V., Karpova A.L., Voynovskiy A.E., Novosartyan M.G., Lazarchuk A.V., Khisamieva A.R., Tatarintseva A.Y., Vorobev A.V., Agasyan K.V., Kapanadze D.L., Zainulina M.S., Serov V.N., Blinov D.V., Gris J., Van Dreden P., Elalamy I., Gerotziafas G., Makatsariya A.D., 2025

2025

Бицадзе В.О., Хизроева Д.Х., Третьякова М.В., Макацария Н.А., Габидуллина Р.И., Мостовой А.В., Карпова А.Л., Войновский А.Е., Новосатрян М.Г., Лазарчук А.В., Хисамиева А.Р., Татаринцева А.Ю., Воробьев А.В., Агасян К.В., Капанадзе Д.Л., Зайнулина М.С., Серов В.Н., Блинов Д.В., Гри Ж., Ван Дреден П., Элалами И., Геротзиафас Г., Макацария А.Д.

Bitsadze V.O., Khizroeva J.K., Tretyakova M.V., Makatsariya N.A., Gabidullina R.I., Mostovoi A.V., Karpova A.L., Voynovskiy A.E., Novosartyan M.G., Lazarchuk A.V., Khisamieva A.R., Tatarintseva A.Y., Vorobev A.V., Agasyan K.V., Kapanadze D.L., Zainulina M.S., Serov V.N., Blinov D.V., Gris J., Van Dreden P., Elalamy I., Gerotziafas G., Makatsariya A.D.

Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.

This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.

https://www.gynecology.su/jour/article/view/2431

The article is dedicated to outlining the pathogenic mechanisms, diagnostic criteria, and treatment of systemic inflammatory response syndrome (SIRS), thromboinflammation, and septic shock in fetuses and newborns. SIRS is a body hyperreaction to external stress involving biologically active molecules, cytokines such as tumor necrosis factor-alpha (TNF-α) and interleukin (IL) IL-1 so that a balance between inflammation and adaptive mechanisms becomes altered. Special attention is paid to fetal inflammatory response syndrome (FIRS). Here, we describe the broad impact of FIRS targeting vital organs and systems. The challenges in diagnosing and treating septic shock in newborns are discussed, highlighting a crosstalk between inflammation and hemostasis. Despite progress in understanding the molecular mechanisms underlying FIRS and sepsis, some obstacles in developing effective therapeutic strategies remain. This underscores a need for conducting targeted research to reduce morbidity and mortality related to thromboinflammation and septic shock.

Статья посвящена патогенетическим механизмам, диагностическим критериям и лечению синдрома системного воспалительного ответа (ССВО), тромбовоспаления и септического шока у плодов и новорожденных. ССВО в современном контексте рассматривается как гиперреакция организма на внешний стресс, во время которой происходит нарушение баланса между воспалением и адаптивными механизмами, с участием биологически активных молекул, цитокинов, например, факторa некроза опухоли альфа (англ. tumor necrosis factor-alpha, TNF-α) и интерлейкина (англ. interleukin, IL) IL-1. Особое внимание уделяется синдрому воспалительного ответа плода (англ. fetal inflammatory response syndrome, FIRS). В статье описано широкое воздействие FIRS на жизненно важные органы и системы, которые поражаются в результате данного состояния. Обсуждаются трудности диагностики и лечения септического шока у новорожденных, подчеркивается взаимосвязь воспаления и системы гемостаза. Несмотря на прогресс в понимании молекулярных механизмов развития FIRS и сепсиса, на сегодняшний день до сих пор наблюдаются проблемы в разработке эффективных терапевтических стратегий. Это подчеркивает необходимость целенаправленных исследований для снижения заболеваемости и смертности, связанных с тромбовоспалением и септическим шоком.

синдром системного воспалительного ответаССВОсепсиссептический шоктромбовоспалениекоагулопатия

systemic inflammatory response syndromeSIRSsepsisseptic shockthromboinflammationcoagulopathy

References1

Линников В.И., Линников С.В., Макацария Н.А. Санарелли и Шварцман, историческая справка. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2022;16(3):324–7. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2022.320.

Linnikov V.I., Linnikov S.V., Makatsariya N.A. Sanarelli and Schwartzman, a historical background. [Sanarelli i Shvarcman, istoricheskaya spravka]. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2022;16(3):324–7. (In Russ.). https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2022.320.

Chakraborty R.K., Burns B. Systemic inflammatory response syndrome. In: StatPearls. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing, 2025 Jan.

Wang Y., Dong H., Dong T. et al. Treatment of cytokine release syndrome-induced vascular endothelial injury using mesenchymal stem cells. Mol Cell Biochem. 2024;479(5):1149–64. https://doi.org/10.1007/s11010-023-04785-1.

Безнощенко Г.Б. Синдром системного воспалительного ответа в акушерской клинике: решенные вопросы и нерешенные проблемы. Российский вестник акушера-гинеколога. 2018;18(4):6–10. https://doi.org/10.17116/rosakush20181846.

Beznoshchenko G.B. Systemic inflammatory response syndrome in an obstetric clinic: resolved and unresolved problems. [Sindrom sistemnogo vospalitel'nogo otveta v akusherskoj klinike: reshennye voprosy i nereshennye problemy]. Rossijskij vestnik akushera-ginekologa. 2018;18(4):6–10. (In Russ.). https://doi.org/10.17116/rosakush20181846.

Sikora J.P., Karawani J., Sobczak J. Neutrophils and the systemic inflammatory response syndrome (SIRS). Int J Mol Sci. 2023;24(17):13469. https://doi.org/10.3390/ijms241713469.

De Felice C., De Capua B., Costantini D. et al. Recurrent otitis media with effusion in preterm infants with histologic chorioamnionitis – a 3 years follow-up study. Early Hum Dev. 2008;84(10):667–71. https://doi.org/10.1016/j.earlhumdev.2008.04.008.

Karrow N.A. Activation of the hypothalamic-pituitary-adrenal axis and autonomic nervous system during inflammation and altered programming of the neuroendocrine-immune axis during fetal and neonatal development: lessons learned from the model inflammagen, lipopolysaccharide. Brain Behav Immun. 2006;20(2):144–58. https://doi.org/10.1016/j.bbi.2005.05.003.

Para R., Romero R., Miller D. et al. The distinct immune nature of the fetal inflammatory response syndrome type I and type II. Immunohorizons. 2021;5(9):735–51. https://doi.org/10.4049/immunohorizons.2100047.

Glavina-Durdov M., Springer O., Capkun V. et al. The grade of acute thymus involution in neonates correlates with the duration of acute illness and with the percentage of lymphocytes in peripheral blood smear. Pathological study. Biol Neonate. 2003;83(4):229–34. https://doi.org/10.1159/000069481.

Stra??k Z., Berka I., ?irc J. et al. Role of umbilical interleukin-6, procalcitonin and C-reactive protein measurement in the diagnosis of fetal inflammatory response syndrome. Ceska Gynekol. 2021;86(2):80–5. https://doi.org/10.48095/cccg202180.

Persson G., J?rgensen N., Nilsson L.L. et al. A role for both HLA-F and HLA-G in reproduction and during pregnancy? Hum Immunol. 2020;81(4):127–33. https://doi.org/10.1016/j.humimm.2019.09.006.

Nomiyama M., Nakagawa T., Yamasaki F. et al. Contribution of fetal inflammatory response syndrome (FIRS) with or without maternal-fetal inflammation in the placenta to increased risk of respiratory and other complications in preterm neonates. Biomedicines. 2023;11(2):611. https://doi.org/10.3390/biomedicines11020611.

Romero R., Savasan Z.A., Chaiworapongsa T. et al. The hematologic profile of the fetus with systemic inflammatory response syndrome. J Perinat Med. 2011;40(1):19–32. https://doi.org/10.1515/JPM.2011.100.

Ead J.K., Armstrong D.G. Granulocyte-macrophage colony-stimulating factor: conductor of the wound healing orchestra? Int Wound J. 2023;20(4):1229–34. https://doi.org/10.1111/iwj.13919.

Зурочка А.В., Зурочка В.А., Добрынина М.А., Гриценко В.А. Иммунобиологические свойства гранулоцитарно-макрофагального колониестимулирующего фактора и синтетических пептидов его активного центра. Медицинская иммунология. 2021;23(5):1031–54. https://doi.org/10.15789/1563-0625-IPO-2216.

Zurochka A.V., Zurochka V.A., Dobrynina M.A., Gritsenko V.A. Immunobiological properties of granulocytemacrophage colony-stimulating factor and synthetic peptides of his active center. [Immunobiologicheskie svojstva granulocitarno-makrofagal'nogo koloniestimuliruyushchego faktora i sinteticheskih peptidov ego aktivnogo centra]. Medicinskaya immunologiya. 2021;23(5):1031–54. (In Russ.) https://doi.org/10.15789/1563-0625-IPO-2216.

Chaiworapongsa T., Romero R., Berry S.M. et al. The role of granulocyte colony-stimulating factor in the neutrophilia observed in the fetal inflammatory response syndrome. J Perinat Med. 2011;39(6):653–66. https://doi.org/10.1515/jpm.2011.072.

Leikin E., Garry D., Visintainer P. et al. Correlation of neonatal nucleated red blood cell counts in preterm infants with histologic chorioamnionitis. Am J Obstet Gynecol. 1997;177(1):27–30. https://doi.org/10.1016/s0002-9378(97)70433-2.

Mandel D., Oron T., Mimouni G.S. et al. The effect of prolonged rupture of membranes on circulating neonatal nucleated red blood cells. J Perinatol. 2005;25(11):690–3. https://doi.org/10.1038/sj.jp.7211389.

Romero R., Soto E., Berry S.M. et al. Blood pH and gases in fetuses in preterm labor with and without systemic inflammatory response syndrome. J Matern Fetal Neonatal Med. 2012;25(7):1160–70. https://doi.org/10.3109/14767058.2011.629247.

Zaharie G.C., Drugan T., Crivii C. et al. Postpartum assessment of fetal inflammatory response syndrome in a preterm population with premature rupture of membranes: a Romanian study. Exp Ther Med. 2021;22(6):1427. https://doi.org/10.3892/etm.2021.10862.

Kallapur S.G., Willet K.E., Jobe A.H. et al. Intra-amniotic endotoxin: chorioamnionitis precedes lung maturation in preterm lambs. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2001;280(3):L527–36. https://doi.org/10.1152/ajplung.2001.280.3.L527.

Yoon B.H., Romero R., Kim K.S. et al. A systemic fetal inflammatory response and the development of bronchopulmonary dysplasia. Am J Obstet Gynecol. 1999;181(4):773–9. https://doi.org/10.1016/s0002-9378(99)70299-1.

Sarno L., Corte L. D., Saccone G. et al. Histological chorioamnionitis and risk of pulmonary complications in preterm births: a systematic review and meta-analysis. J Matern Fetal Neonatal Med. 2021;34(22):3803–12. https://doi.org/10.1080/14767058.2019.1689945.

Wu J., Wang Y., Zhao A., Wang Z. Lung ultrasound for the diagnosis of neonatal respiratory distress syndrome: a meta-analysis. Ultrasound Q. 2020;36(2):102–10. https://doi.org/10.1097/RUQ.0000000000000490.

Dessardo N.S., Dessardo S., Musta? E. et al. Chronic lung disease of prematurity and early childhood wheezing: is foetal inflammatory response syndrome to blame? Early Hum Dev. 2014;90(9):493–9. https://doi.org/10.1016/j.earlhumdev.2014.07.002.

Yap V., Perlman J.M. Mechanisms of brain injury in newborn infants associated with the fetal inflammatory response syndrome. Semin Fetal Neonatal Med. 2020;25(4):101110. https://doi.org/10.1016/j.siny.2020.101110.

Muraskas J.K., Kelly A.F., Nash M.S. et al. The role of fetal inflammatory response syndrome and fetal anemia in nonpreventable term neonatal encephalopathy. J Perinatol. 2016;36(5):362–5. https://doi.org/10.1038/jp.2015.214.

Yoon B.H., Romero R., Kim C.J. et al. High expression of tumor necrosis factor-? and interleukin-6 in periventricular leukomalacia. Am J Obstet Gynecol. 1997;177(2):406–11. https://doi.org/10.1016/s0002-9378(97)70206-0.

Kadhim H., Tabarki B., Verellen G. et al. Inflammatory cytokines in the pathogenesis of periventricular leukomalacia. Neurology. 2001;56(10):1278–84. https://doi.org/10.1212/wnl.56.10.1278.

Stolp H.B., Dziegielewska K.M., Ek C.J. et al. Breakdown of the blood-brain barrier to proteins in white matter of the developing brain following systemic inflammation. Cell Tissue Res. 2005;320(3):369–78. https://doi.org/10.1007/s00441-005-1088-6.

Александров А.Г., Блинов Д.В. Прорыв гематоэнцефалического барьера после острой гипоксии головного мозга у детей. Реабилитология. 2024;2(1):107–14. https://doi.org/10.17749/2949-5873/rehabil.2024.13.

Aleksandrov A.G., Blinov D.V. Blood-brain barrier breach after acute cerebral hypoxia in infants. [Proryv gematoencefalicheskogo bar'era posle ostroj gipoksii golovnogo mozga u detej]. Journal of Medical Rehabilitation. 2024;2(1):107–14. (In Russ.). https://doi.org/10.17749/2949-5873/rehabil.2024.13.

Александров А.Г., Петренко Д.А. Перспективные биомаркеры нарушения проницаемости гематоэнцефалического барьера в реабилитации детей с перинатальным гипоксическии-шемическим поражением центральной нервной системы. Реабилитология. 2024;2(2):207–15. https://doi.org/10.17749/2949-5873/rehabil.2024.9.

Aleksandrov A.G., Petrenko D.A. Promising biomarkers of blood-brain barrier permeability impairment in rehabilitation of infants with perinatal hypoxic-ischemic central nervous system injury. [Perspektivnye biomarkery narusheniya pronicaemosti gematoencefalicheskogo bar'era v reabilitacii detej s perinatal'nym gipoksicheskii-shemicheskim porazheniem central'noj nervnoj sistemy]. Journal of Medical Rehabilitation. 2024;2(2):207–15. (In Russ.). https://doi.org/10.17749/2949-5873/rehabil.2024.9.

Zhang Z., Jyoti A., Balakrishnan B. et al. Trajectory of inflammatory and microglial activation markers in the postnatal rabbit brain following intrauterine endotoxin exposure. Neurobiol Dis. 2018;111:153–62. https://doi.org/10.1016/j.nbd.2017.12.013.

Giovannini E., Bonasoni M.P., Pascali J.P. et al. Infection induced fetal inflammatory response syndrome (FIRS): state-of- the-art and medico-legal implications – a narrative review. Microorganisms. 2023;11(4):1010. https://doi.org/10.3390/microorganisms11041010.

Goncalves L.F., Cornejo P., Towbin R. Neuroimaging findings associated with the fetal inflammatory response syndrome. Semin Fetal Neonatal Med. 2020;25(4):101143. https://doi.org/10.1016/j.siny.2020.101143.

Boog G. Cerebral palsy and perinatal asphyxia (I – diagnosis). Gynecol Obstet Fertil. 2010;38(4):261–77. (In French). https://doi.org/10.1016/j.gyobfe.2010.02.009.

Кожанова Т.В., Жилина С.С., Мещерякова Т.И. и др. SPTAN1-ассоциированная энцефалопатия развития и эпилептическая энцефалопатия. Эпилепсия и пароксизмальные состояния. 2023;15(3):246–29. https://doi.org/10.17749/2077-8333/epi.par.con.2023.150.

Kozhanova T.V., Zhilina S.S., Meshcheryakova T.I. et al. SPTAN1-associated developmental and epileptic encephalopathy. [SPTAN1-associirovannaya encefalopatiya razvitiya i epilepticheskaya encefalopatiya]. Epilepsy and paroxysmal conditions. 2023;15(3):246–59. (In Russ.). https://doi.org/10.17749/2077-8333/epi.par.con.2023.150.

Малов А.Г., Калашникова Т.П., Вдовина Н.А. Клинические особенности эволюционной и эпилептической энцефалопатии, вызванной мутацией в гене KCNQ2. Эпилепсия и пароксизмальные состояния. 2023;15(4):354–60. https://doi.org/10.17749/2077-8333/epi.par.con.2023.171.

Malov А.G., Kalashnikova Т.P., Vdovina N.А. Clinical features of developmental and epileptic encephalopathy caused by KCNQ2 gene mutation. [Klinicheskie osobennosti evolyucionnoj i epilepticheskoj encefalopatii, vyzvannoj mutaciej v gene KCNQ2]. Epilepsy and paroxysmal conditions. 2023;15(4):354–60. (In Russ.). https://doi.org/10.17749/2077-8333/epi.par.con.2023.171.

Абусуева Б.А., Шанавазова М.Д., Аскевова М.А. и др. Случай атипичного течения тяжелой миоклонической эпилепсии младенчества (синдрома Драве). Эпилепсия и пароксизмальные состояния. 2024;16(2):130–6. https://doi.org/10.17749/2077-8333/epi.par.con.2024.180.

Abusueva B.A., Shanavazova M.D., Askevova М.A. et al. Atypical course of severe myoclonic epilepsy of infancy (Dravet syndrome). [Sluchaj atipichnogo techeniya tyazheloj mioklonicheskoj epilepsii mladenchestva (sindroma Drave)]. Epilepsy and paroxysmal conditions. 2024;16(2):130–6. (In Russ.). https://doi.org/10.17749/2077-8333/epi.par.con.2024.180.

Song J.S., Woo S.J., Park K.H. et al. Association of inflammatory and angiogenic biomarkers in maternal plasma with retinopathy of prematurity in preterm infants. Eye (Lond). 2023;37(9):1802–9. https://doi.org/10.1038/s41433-022-02234-9.

Park Y.J., Woo S.J., Kim Y.M. et al. Immune and inflammatory proteins in cord blood as predictive biomarkers of retinopathy of prematurity in preterm infants. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2019;60(12):3813–20. https://doi.org/10.1167/iovs.19-27258.

Gibson B., Goodfriend E., Zhong Y., Melhem N.M. Fetal inflammatory response and risk for psychiatric disorders. Transl Psychiatry. 2023;13(1):224. https://doi.org/10.1038/s41398-023-02505-3.

Yoon B.H., Kim Y.A., Romero R. et al. Association of oligohydramnios in women with preterm premature rupture of membranes with an inflammatory response in fetal, amniotic, and maternal compartments. Am J Obstet Gynecol. 1999;181(4):784–788. https://doi.org/10.1016/s0002-9378(99)70301-7.

Lee S.E., Romero R., Lee S.M., Yoon B.H. Amniotic fluid volume in intra-amniotic inflammation with and without culture-proven amniotic fluid infection in preterm premature rupture of membranes. J Perinat Med. 2010;38(1):39–44. https://doi.org/10.1515/jpm.2009.123.

Azpurua H., Dulay A.T., Buhimschi I.A. et al. Fetal renal artery impedance as assessed by Doppler ultrasound in pregnancies complicated by intraamniotic inflammation and preterm birth. Am J Obstet Gynecol. 2009;200(2):203.e1–11. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2008.11.001.

Galinsky R., Moss T.J.M., Gubhaju L. et al. Effect of intra-amniotic lipopolysaccharide on nephron number in preterm fetal sheep. Am J Physiol Renal Physiol. 2011;301(2):F280–5. https://doi.org/10.1152/ajprenal.00066.2011.

Stantsidou A., Pagonopoulou O., Deftereou T. Effects of chorioamnionitis in fetal renal glomeruli. Hippokratia. 2021;25(2):98.

Muk T., Jiang P.-P., Stensballe A. et al. Prenatal endotoxin exposure induces fetal and neonatal renal inflammation via innate and Th1 immune activation in preterm pigs. Front Immunol. 2020;11:565484. https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.565484.

Kuypers E., Wolfs T.G.A.M., Collins J.J.P. et al. Intraamniotic lipopolysaccharide exposure changes cell populations and structure of the ovine fetal thymus. Reprod Sci. 2013;20(8):946–56. https://doi.org/10.1177/1933719112472742.

Luciano A.A., Yu H., Jackson L.W. et al. Preterm labor and chorioamnionitis are associated with neonatal T cell activation. PLoS One. 2011;6(2):e16698. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0016698.

Melville J.M., Bischof R.J., Meeusen E.N. et al. Changes in fetal thymic immune cell populations in a sheep model of intrauterine inflammation. Reprod Sci. 2012;19(7):740–7. https://doi.org/10.1177/1933719111432873.

Kramer B.W., Moss T.J., Willet K.E. et al. Dose and time response after intraamniotic endotoxin in preterm lambs. Am J Respir Crit Care Med. 2001;164(6):982–8. https://doi.org/10.1164/ajrccm.164.6.2103061.

Kuypers E., Willems M.G.M., Jellema R.K. et al. Responses of the spleen to intraamniotic lipopolysaccharide exposure in fetal sheep. Pediatr Res. 2015;77(1–1):29–35. https://doi.org/10.1038/pr.2014.152.

Musilova I., Kacerovsky M., Hornychova H. et al. Pulsation of the fetal splenic vein – a potential ultrasound marker of histological chorioamnionitis and funisitis in women with preterm prelabor rupture of membranes. Acta Obstet Gynecol Scand. 2012;91(9):1119–23. https://doi.org/10.1111/j.1600-0412.2012.01450.x.

Yan X., Managlia E., Tan X.-D., De Plaen I.G. Prenatal inflammation impairs intestinal microvascular development through a TNF-dependent mechanism and predisposes newborn mice to necrotizing enterocolitis. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2019;31(1)7:G57–G66. https://doi.org/10.1152/ajpgi.00332.2018.

Razak A., Malhotra A. Fetal inflammatory response spectrum: mapping its impact on severity of necrotising enterocolitis. Pediatr Res. 2024;95:1179–80. https://doi.org/10.1038/s41390-023-02973-9.

Bieghs V., Vlassaks E., Custers A. et al. Chorioamnionitis induced hepatic inflammation and disturbed lipid metabolism in fetal sheep. Pediatr Res. 2010;68(6):466–72. https://doi.org/10.1203/PDR.0b013e3181f70eeb.

Heymans C., den Dulk M., Lenaerts K. et al. Chorioamnionitis induces hepatic inflammation and time-dependent changes of the enterohepatic circulation in the ovine fetus. Sci Rep. 2021;11(1):10331. https://doi.org/10.1038/s41598-021-89542-4.

Сергеева В.А., Шабалов Н.П., Александрович Ю.С., Нестеренко С.Н. Предопределяет ли фетальный воспалительный ответ осложненное течение раннего неонатального периода? Сибирский медицинский журнал. 2010;(4):75–80.

Sergeeva V.A., Shabalov N.P., Aleksandrovich Yu.S., Nesterenko S.N. Does the fetal inflammatory response syndrome determinate complicated early neonatal period? [Predopredelyaet li fetal'nyj vospalitel'nyj otvet oslozhnyonnoe techenie rannego neonatal'nogo perioda?] Sibirskij medicinskij zhurnal. 2010;(4):75–80. (In Russ.).

Watterberg K.L., Demers L.M., Scott S.M., Murphy S. Chorioamnionitis and early lung inflammation in infants in whom bronchopulmonary dysplasia develops. Pediatrics. 1996;97(2):210–5.

Volpe J.J. Postnatal sepsis, necrotizing entercolitis, and the critical role of systemic inflammation in white matter injury in premature infants. J Pediatr. 2008;153(2):160–3. https://doi.org/10.1016/j.jpeds.2008.04.057.

Eloundou S.N., Lee J., Wu D. et al. Placental malperfusion in response to intrauterine inflammation and its connection to fetal sequelae. PLoS One. 2019;14(4):e0214951. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0214951.

Luciano A.A., Arbona-Ramirez I.M., Ruiz R. et al. Alterations in regulatory T cell subpopulations seen in preterm infants. PLoS One. 2014;9(5):e95867. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0095867.

Карпова А.Л., Мостовой А.В., Дудкина Е.А. и др. Ранний неонатальный сепсис в эпоху COVID-19. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2023;17(3):284–98. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2023.389.

Karpova A.L., Mostovoi A.V., Dudkina E.А. et al. Early neonatal sepsis in COVID-19 era. [Rannij neonatal'nyj sepsis v epohu COVID-19]. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2023;17(3):284–98. (In Russ.). https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2023.389.

Баялиева А.Ж., Давыдова В.Р. Септический шок в акушерстве: роль эфферентных методик в удалении эндотоксина при грамотрицательном сепсисе. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2024;18(4):504–13. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2024.509.

Bayalieva A.Zh., Davydova V.R. Septic shock in obstetrics: the role of efferent techniques for endotoxin removal in Gram-negative sepsis. [Septicheskij shok v akusherstve: rol' efferentnyh metodik v udalenii endotoksina pri gramotricatel'nom sepsise]. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2024;18(4):504–13. (In Russ.). https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2024.509.

Muraskas J., Astrug L., Amin S. FIRS: neonatal considerations. Semin Fetal Neonatal Med. 2020;25(4):101142. https://doi.org/10.1016/j.siny.2020.101142.

Agyeman P.K.A., Schlapbach L.J., Giannoni E. et al. Epidemiology of blood culture-proven bacterial sepsis in children in Switzerland: a population-based cohort study. Lancet Child Adolesc Health. 2017;1(2):124–33. https://doi.org/10.1016/S2352-4642(17)30010-X.

Wynn J.L., Wong H.R. Pathophysiology and treatment of septic shock in neonates. Clin Perinatol. 2010;37(2):439–79. https://doi.org/10.1016/j.clp.2010.04.002.

Самсыгина Г.А. Сепсис и септический шок у новорожденных детей. Педиатрия. Журнал имени Г.Н. Сперанского. 2009;87(1):120–7.

Samsygina G.A. Sepsis and septic shock in newborns. [Sepsis i septicheskij shok u novorozhdennyh detej]. Pediatriya. Zhurnal imeni G.N. Speranskogo. 2009;87(1):120–7. (In Russ.).

Spaggiari V., Passini E., Crestani S. et al. Neonatal septic shock, a focus on first line interventions. Acta Biomed. 2022;93(3):e2022141. https://doi.org/10.23750/abm.v93i3.12577.

Schorr C.A., Zanotti S., Dellinger R.P. Severe sepsis and septic shock. Virulence. 2014;5(1):190–9. https://doi.org/10.4161/viru.27409.

de Cássia Silveira R., Giacomini C., Procianoy R.S. Neonatal sepsis and septic shock: concepts update and review. Rev Bras Ter Intensiva. 2010;22(3):280–90. (In English, Portuguese).

de C?ssia Silveira R., Giacomini C., Procianoy R.S. Neonatal sepsis and septic shock: concepts update and review. Rev Bras Ter Intensiva. 2010;22(3):280–90. (In English, Portuguese).

Khizroeva J., Makatsariya A., Vorobev A. et al. The hemostatic system in newborns and the risk of neonatal thrombosis. Int J Mol Sci. 2023;24(18):13864. https://doi.org/10.3390/ijms241813864.

Andrew M., Vegh P., Johnston M. et al. Maturation of the hemostatic system during childhood. Blood. 1992;80(8):1998–2005.

Wiedmeier S.E., Henry E., Sola-Visner M.C., Christensen et al. Platelet reference ranges for neonates, defined using data from over 47,000 patients in a multihospital healthcare system. J Perinatol. 2009;29(2):130–6. https://doi.org/10.1038/jp.2008.141.

Бицадзе В.О., Суконцева Т.А., Акиньшина С.В. и др. Септический шок. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2020;14(3):314–26. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2020.169.

Bitsadze V.O., Sukontseva T.A., Akinshina S.V. et al. Septic shock. [Septicheskij shok]. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2020;14(3):314–26. (In Russ.). https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2020.169.

Мальцева Л.А., Базиленко Д.В. Патогенез тяжелого сепсиса и септического шока: анализ современных концепций. Медицина неотложных состояний. 2015;(7):35–40.

Maltseva L.A., Bazilenko D.V. Pathogenesis of severe sepsis and septic shock: analysis of modern concepts. [Patogenez tyazhelogo sepsisa i septicheskogo shoka: analiz sovremennyh koncepcij]. Medicina neotlozhnyh sostoyanij. 2015;(7):35–40. (In Russ.).

Бицадзе В.О., Хизроева Д.Х., Макацария Д.А. и др. COVID-19, септический шок и синдром диссеминированного внутрисосудистого свертывания крови. Часть 1. Вестник РАМН. 2020;75(2):118–28. https://doi.org/10.15690/vramn1335.

Bitsadze V.O., Khizroeva J.Kh., Makatsariya D.A. et al. COVID-19, septic shock and disseminated intravascular coagulation syndrome. Part 1. [COVID-19, septicheskij shok i sindrom disseminirovannogo vnutrisosudistogo svertyvaniya krovi. Chast' 1]. Vestnik RAMN. 2020;75(2):118–28. (In Russ.). https://doi.org/10.15690/vramn1335.

Levi M., van der Poll T. Coagulation and sepsis. Thromb Res. 2017;149:38–44. https://doi.org/10.1016/j.thromres.2016.11.007.

Green J., Doughty L., Kaplan S.S. et al. The tissue factor and plasminogen activator inhibitor type-1 response in pediatric sepsis-induced multiple organ failure. Thromb Haemost. 2002;87(2):218–23.

Dempfle C.-E. The TAFI system. The new role of fibrinolysis. Hamostaseologie. 2007;27(4):278–81. (In German).

Stief T.W., Ijagha O., Weiste B. et al. Analysis of hemostasis alterations in sepsis. Blood Coagul Fibrinolysis. 2007;18(2):179–86. https://doi.org/10.1097/MBC.0b013e328040bf9a.

Gando S. Role of fibrinolysis in sepsis. Semin Thromb Hemost. 2013;39(4):392–9. https://doi.org/10.1055/s-0033-1334140.

Willemse J.L., Heylen E., Nesheim M.E., Hendriks D.F. Carboxypeptidase U (TAFIa): a new drug target for fibrinolytic therapy? J Thromb Haemost. 2009;7(12):1962–71. https://doi.org/10.1111/j.1538-7836.2009.03596.x.

Emonts M., De bruijne E.L.E., Guimar?es A.H.C. et al. Thrombin activatable fibrinolysis inhibitor is associated with severity and outcome of severe meningococcal infection in children. J Thromb Haemost. 2008;6(2):268–76. https://doi.org/10.1111/j.1538-7836.2008.02841.x.

Продеус А.П., Устинова М.В., Корсунский А.А., Гончаров А.Г. Новые аспекты патогенеза сепсиса и септического шока у детей. Система комплемента как мишень для эффективной терапии. Инфекция и иммунитет. 2018;8(1):19–24. https://doi.org/10.15789/2220-7619-2018-1-19-24.

Prodeus A.P., Ustinova M.V., Korsunskiy A.A., Goncharov A.G. New aspects of the pathogenesis of sepsis and septic shock in children. The complement system as a target for an effective therapy. [Novye aspekty patogeneza sepsisa i septicheskogo shoka u detej. Sistema komplementa kak mishen' dlya effektivnoj terapii]. Infekciya i immunitet. 2018;8(1):19–24. (In Russ.). https://doi.org/10.15789/2220-7619-2018-1-19-24.

Hazelzet J.A., de Groot R., van Mierlo G. et al Complement activation in relation to capillary leakage in children with septic shock and purpura. Infect Immun. 1998;66(11):5350–6. https://doi.org/10.1128/IAI.66.11.5350-5356.1998.

Kelwick R., Desanlis I., Wheeler G.N., Edwards D.R. The ADAMTS (a disintegrin and metalloproteinase with thrombospondin motifs) family. Genome Biol. 2015;16(1):113. https://doi.org/10.1186/s13059-015-0676-3.

Levi M., Scully M., Singer M. The role of ADAMTS-13 in the coagulopathy of sepsis. J Thromb Haemost. 2018;16(4):646–51. https://doi.org/10.1111/jth.13953.

Levi M., Opal S.M. Coagulation abnormalities in critically ill patients. Crit Care. 2006;10(4):222. https://doi.org/10.1186/cc4975.

Pillai V.G., Bao J., Zander C.B. et al. Human neutrophil peptides inhibit cleavage of von Willebrand factor by ADAMTS13: a potential link of inflammation to TTP. Blood. 2016;128(1):110–9. https://doi.org/10.1182/blood-2015-12-688747.

Chen J., Chung D.W. Inflammation, von Willebrand factor, and ADAMTS13. Blood. 2018;132(2):141–7. https://doi.org/10.1182/blood-2018-02-769000.

Peigne V., Azoulay E., Coquet I. et al. The prognostic value of ADAMTS13 (a disintegrin and metalloprotease with thrombospondin type 1 repeats, member 13) deficiency in septic shock patients involves interleukin-6 and is not dependent on disseminated intravascular coagulation. Crit Care. 2013;17(6):R273. https://doi.org/10.1186/cc13115.

Habe K., Wada H., Ito-Habe N. et al. Plasma ADAMTS13, von Willebrand factor (VWF) and VWF propeptide profiles in patients with DIC and related diseases. Thromb Res. 2012;129(5):598–602. https://doi.org/10.1016/j.thromres.2011.10.011.

Ono T., Mimuro J., Madoiwa S. et al. Severe secondary deficiency of von Willebrand factor-cleaving protease (ADAMTS13) in patients with sepsis-induced disseminated intravascular coagulation: its correlation with development of renal failure. Blood. 2006;107(5):528–34. https://doi.org/10.1182/blood-2005-03-1087.

Schwameis M., Schörgenhofer C., Assinger A. et al. VWF excess and ADAMTS13 deficiency: a unifying pathomechanism linking inflammation to thrombosis in DIC, malaria, and TTP. Thromb Haemost. 2015;113(4):708–18. https://doi.org/10.1160/TH14-09-0731.

Schwameis M., Sch?rgenhofer C., Assinger A. et al. VWF excess and ADAMTS13 deficiency: a unifying pathomechanism linking inflammation to thrombosis in DIC, malaria, and TTP. Thromb Haemost. 2015;113(4):708–18. https://doi.org/10.1160/TH14-09-0731.

Emmer B.T., Ginsburg D., Desch K.C. VWF and ADAMTS13: too much or too little of a good thing? Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2016;36(12):2281–2. https://doi.org/10.1161/ATVBAHA.116.308531.

Sonneveld M.A.H., Franco O.H., Ikram M.A. et al. Von Willebrand factor, ADAMTS13, and the risk of mortality: the Rotterdam Study. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2016;36(12):2446–51. https://doi.org/10.1161/ATVBAHA.116.308225.

Papadogeorgou P., Boutsikou T., Boutsikou M. et al. A global assessment of coagulation profile and a novel insight into Adamts-13 implication in neonatal sepsis. Biology. 2023;12(10):1281. https://doi.org/10.3390/biology12101281.

100

Kansas G.S. Selectins and their ligands: current concepts and controversies. Blood. 1996;88(9):3259–87.

101

Martinod K., Deppermann C. Immunothrombosis and thromboinflammation in host defense and disease. Platelets. 2021;32(3):314–24. https://doi.org/10.1080/09537104.2020.1817360.

102

Rossaint J., Margraf A., Zarbock A. Role of platelets in leukocyte recruitment and resolution of inflammation. Front Immunol. 2018;9:2712. https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.02712

103

Iba T., Levy J.H. Inflammation and thrombosis: roles of neutrophils, platelets and endothelial cells and their interactions in thrombus formation during sepsis. J Thromb Haemost. 2018;16(2):231–41. https://doi.org/10.1111/jth.13911.

104

Finkelstein Y., Shenkman B., Sirota L. et al. Whole blood platelet deposition on extracellular matrix under flow conditions in preterm neonatal sepsis. Eur J Pediatr. 2002;161(5):270–4. https://doi.org/10.1007/s00431-002-0938-4.

105

Sadeghi K., Berger A., Langgartner M. et al. Immaturity of infection control in preterm and term newborns is associated with impaired toll-like receptor signaling. J Infect Dis. 2007;195(2):296–302. https://doi.org/10.1086/509892.

106

Sitaru A.-G., Speer C.P., Holzhauer S. et al. Chorioamnionitis is associated with increased CD40L expression on cord blood platelets. Thromb Haemost. 2005;94(6):1219–23. https://doi.org/10.1160/TH05-02-0127.

107

Aoui C., Prigent A., Sut C. et al. The signaling role of CD40 ligand in platelet biology and in platelet component transfusion. Int J Mol Sci. 2014;15(12):22342–64. https://doi.org/10.3390/ijms151222342.

108

Макацария А.Д., Слуханчук Е.В., Бицадзе В.О. и др. Концепция тромбовоспаления как основы тромботических осложнений, прогрессии опухоли и метастазирования у онкогинекологических больных. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2024;18(4):450–63. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2024.542.

Makatsariya A.D., Slukhanchuk E.V., Bitsadze V.O. et al. The concept of thromboinflammation underlying thrombotic complications, tumor progression and metastasis in gynecological cancer patients. [Koncepciya trombovospaleniya kak osnovy tromboticheskih oslozhnenij, progressii opuholi i metastazirovaniya u onkoginekologicheskih bol'nyh]. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2024;18(4):450–63. (In Russ.). https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2024.542.

109

Слуханчук Е.В., Бицадзе В.О., Солопова А.Г. и др. Внеклеточные ловушки нейтрофилов как маркеры тромбовоспаления в патогенезе злокачественных новообразований женских половых органов и молочной железы. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2022;16(4):426–37. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2022.335.

Slukhanchuk E.V., Bitsadze V.O., Solopova A.G. et al. Neutrophil extracellular traps as markers of thromboinflammation in the pathogenesis of female genital tract and breast malignant neoplasms. [Vnekletochnye lovushki nejtrofilov kak markery trombovospaleniya v patogeneze zlokachestvennyh novoobrazovanij zhenskih polovyh organov i molochnoj zhelezy]. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2022;16(4):426–37. (In Russ.). https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2022.335.

110

Асланова З.Д., Хизроева Д.Х., Солопова А.Г. и др. Клиническое значение определения внеклеточных ловушек нейтрофилов у женщин с онкогинекологическими заболеваниями. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2023;17(6):751–68. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2023.447.

Aslanova Z.D., Khizroeva J.Kh., Solopova A.G. et al. Clinical significance of determining neutrophil extracellular traps in women with oncogynecological neoplasms. [Klinicheskoe znachenie opredeleniya vnekletochnyh lovushek nejtrofilov u zhenshchin s onkoginekologicheskimi zabolevaniyami]. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2023;17(6):751–68. (In Russ.). https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2023.447.

111

Макацария А.Д. COVID-19 и системные тромботические синдромы. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2024;18(6):908–18. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2024.590.

Makatsariya A.D. COVID-19 and systemic thrombotic syndromes. [COVID-19 i sistemnye tromboticheskie sindromy]. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2024;18(6):908–18. (In Russ.). https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2024.590.

112

Слуханчук Е.В., Бицадзе В.О., Солопова А.Г. и др. Маркеры внеклеточных ловушек нейтрофилов у женщин со злокачественными новообразованиями репродуктивной системы, получавших хирургическое лечение и адъювантную терапию. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2023;17(4):420–32. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2023.432.

Slukhanchuk E.V., Bitsadze V.O., Solopova A.G. et al. Neutrophil extracellular traps-associated markers in malignant neoplasms of the female reproductive system after surgical treatment and adjuvant chemotherapy. [Markery vnekletochnyh lovushek nejtrofilov u zhenshchin so zlokachestvennymi novoobrazovaniyami reproduktivnoj sistemy, poluchavshih hirurgicheskoe lechenie i ad"yuvantnuyu terapiyu]. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2023;17(4):420–32. (In Russ.). https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2023.432.

113

Слуханчук Е.В., Бицадзе В.О., Солопова А.Г. и др. Вклад внеклеточных ловушек нейтрофилов в протромботическое состояние и прогрессию опухоли у онкогинекологических пациенток. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2023;17(1):53–64. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2023.385.

Slukhanchuk E.V., Bitsadze V.O., Solopova A.G. et al. An impact of neutrophil extracellular traps to the prothrombotic state and tumor progression in gynecological cancer patients. [Vklad vnekletochnyh lovushek nejtrofilov v protromboticheskoe sostoyanie i progressiyu opuholi u onkoginekologicheskih pacientok]. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2023;17(1):53–64. (In Russ.). https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2023.385.

114

Андрюков Б.Г., Богданова В.Д., Ляпун И.Н. Фенотипическая гетерогенность нейтрофилов: новые антимикробные характеристики и диагностические технологии. Гематология и трансфузиология. 2019;64(2):211–21. https://doi.org/10.35754/0234-5730-2019-64-2-211-221.

Andryukov B.G., Bogdanova V.D., Lyapun I.N. Phenotypic heterogeneity of neutrophils: new antimicrobic characteristics and diagnostic technologies. [Fenotipicheskaya geterogennost' nejtrofilov: novye antimikrobnye harakteristiki i diagnosticheskie tekhnologii]. Gematologiya i transfuziologiya. 2019;64(2):211–21. (In Russ.). https://doi.org/10.35754/0234-5730-2019-64-2-211-221.

115

Kaplan M.J., Radic M. Neutrophil extracellular traps: double-edged swords of innate immunity. J Immunol. 2012;189(6):2689–95. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1201719.

116

Fuchs T.A., Brill A., Duerschmied D. et al. Extracellular DNA traps promote thrombosis. Proc Natl Acad Sci U S A. 2010;107(36):15880–5. https://doi.org/10.1073/pnas.1005743107.

117

Hoppenbrouwers T., Boeddha N.P., Ekinci E. et al. Neutrophil extracellular traps in children with meningococcal sepsis. Pediatr Crit Care Med. 2018;19(6):e286–e291. https://doi.org/10.1097/PCC.0000000000001496.

118

McDonald B., Davis R.P., Kim S.-J. et al. Platelets and neutrophil extracellular traps collaborate to promote intravascular coagulation during sepsis in mice. Blood. 2017;129(10):1357–67. https://doi.org/10.1182/blood-2016-09-741298.

119

Fatmi A., Saadi W., Beltr?n-Garc?a J. et al. The endothelial glycocalyx and neonatal sepsis. Int J Mol Sci. 2022;24(1):364. https://doi.org/10.3390/ijms24010364.

120

Dreschers S., Platen C., Ludwig A. et al. Metalloproteinases TACE and MMP-9 differentially regulate death factors on adult and neonatal monocytes after infection with Escherichia coli. Int J Mol Sci. 2019;20(6):1399. https://doi.org/10.3390/ijms20061399.

121

He Y., Du W.X., Jiang H.Y. et al. Multiplex cytokine profiling identifies interleukin-27 as a novel biomarker for neonatal early onset sepsis. Shock. 2017;47(2):140–7. https://doi.org/10.1097/SHK.0000000000000753.

122

Formosa A., Turgeon P., dos Santos C.C. Role of miRNA dysregulation in sepsis. Mol Med. 2022;28(1):99. https://doi.org/10.1186/s10020-022-00527-z.

123

Bindayna K. MicroRNA as sepsis biomarkers: a comprehensive review. Int J Mol Sci. 2024;25(12):6476. https://doi.org/10.3390/ijms25126476.

124

Zheng X., Zhang Y., Lin S. et al. Diagnostic significance of microRNAs in sepsis. PLoS One. 2023;18(2):e0279726. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0279726.

125

Yao J., Lui K.Y., Hu X. et al. Circulating microRNAs as novel diagnostic biomarkers and prognostic predictors for septic patients. Infect Genet Evol. 2021;95:105082. https://doi.org/10.1016/j.meegid.2021.105082.

126

Yong J., Toh C.-H. The convergent model of coagulation. J Thromb Haemost. 2024;22(8):2140–6. https://doi.org/10.1016/j.jtha.2024.05.014.

127

Wilhelm G., Mertowska P., Mertowski S. et al. The crossroads of the coagulation system and the immune system: interactions and connections. Int J Mol Sci. 2023;24(16):12563. https://doi.org/10.3390/ijms241612563.

128

Weiss S.L., Peters M.J., Alhazzani W. et al. Surviving sepsis campaign international guidelines for the management of septic shock and sepsis-associated organ dysfunction in children. Pediatr Crit Care Med. 2020;21(2):e52–e106. https://doi.org/10.1097/PCC.0000000000002198.

129

Haque K.N. Defining common infections in children and neonates. J Hosp Infect. 2007;65 Suppl 2:110–4. https://doi.org/10.1016/S0195-6701(07)60026-7.

130

McGovern M., Giannoni E., Kuester H. et al. Challenges in developing a consensus definition of neonatal sepsis. Pediatr Res. 2020;88(1):14–26. https://doi.org/10.1038/s41390-020-0785-x.

131

Santhanam I., Sangareddi S., Venkataraman S. et al. A prospective randomized controlled study of two fluid regimens in the initial management of septic shock in the emergency department. Pediatr Emerg Care. 2008;24(10):647–55. https://doi.org/10.1097/PEC.0b013e31818844cf.

132

Iroh Tam P.-.Y, Musicha P., Kawaza K. et al. Emerging resistance to empiric antimicrobial regimens for pediatric bloodstream infections in Malawi (1998–2017). Clin Infect Dis. 2019;69(1):61–8. https://doi.org/10.1093/cid/ciy834.

133

Perner A., Haase N., Guttormsen A.B. et al. Hydroxyethyl starch 130/0.42 versus ringer’s acetate in severe sepsis. N Engl J Med. https://doi.org/10.1056/NEJMoa1204242.

134

Scott H.F., Brou L., Deakyne S.J. et al. Lactate clearance and normalization and prolonged organ dysfunction in pediatric sepsis. J Pediatr. 2016;170:149–155.e1–4. https://doi.org/10.1016/j.jpeds.2015.11.071.

135

Ramaswamy K.N., Singhi S., Jayashree M. et al. Double-blind randomized clinical trial comparing dopamine and epinephrine in pediatric fluid-refractory hypotensive septic shock. Pediatr Crit Care Med. 2016;17(11):e502–e512. https://doi.org/10.1097/PCC.0000000000000954.

136

Ventura A.M.C., Shieh H.H., Bousso A. et al. Double-blind prospective randomized controlled trial of dopamine versus epinephrine as first-line vasoactive drugs in pediatric septic shock. Crit Care Med. 2015;43(11):2292–302. https://doi.org/10.1097/CCM.0000000000001260.

137

El-Nawawy A., Khater D., Omar H., Wali Y. Evaluation of early corticosteroid therapy in management of pediatric septic shock in pediatric intensive care patients: a randomized clinical study. Pediatr Infect Dis J. 2017;36(2):155–9. https://doi.org/10.1097/INF.0000000000001380.

138

Ray S., Brick T., Raman S. et al. Haemodynamic changes with paracetamol in critically-ill children. J Crit Care. 2017;40:108–12. https://doi.org/10.1016/j.jcrc.2017.03.026.

139

Nahum E., Weissbach A., Kaplan E., Kadmon G. Hemodynamic effects of intravenous paracetamol in critically ill children with septic shock on inotropic support. J Intensive Care. 2020;8:14. https://doi.org/10.1186/s40560-020-0430-0.

140

Festekjian A., Glavinic J. Pediatric septic shock: recognition and management in the emergency department. Pediatr Emerg Med Pract. 2022;19(11):1–24.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.