References

akusherstvo

Obstetrics, Gynecology and Reproduction

Акушерство, Гинекология и Репродукция

2313-73472500-3194

IRBIS LLC

10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2024.579

akusherstvo-2288

Research Article

REVIEW ARTICLES

НАУЧНЫЕ ОБЗОРЫ

Chemotherapy and hemostasis disorders

Химиотерапия и нарушения гемостаза

https://orcid.org/0000-0001-7441-2778

Слуханчук

Е. В.

Slukhanchuk

E. V.

Слуханчук Екатерина Викторовна, к.м.н.

119991 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Ekaterina V. Slukhanchuk, MD, PhD

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119991

ekaterina@ginekologhirurg.ru

https://orcid.org/0000-0001-8404-1042

Бицадзе

В. О.

Bitsadze

V. O.

Бицадзе Виктория Омаровна, д.м.н., проф., профессор РАН

119991 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Scopus Author ID: 6506003478. WoS ResearcherID: F-8409-2017

Victoria O. Bitsadze, MD, Dr Sci Med, Prof., Professor of RAS

Scopus Author ID: 6506003478. WoS ResearcherID: F-8409-2017

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119991

https://orcid.org/0000-0002-7456-2386

Солопова

А. Г.

Solopova

A. G.

Солопова Антонина Григорьевна, д.м.н., проф.

119991 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Scopus Author ID: 6505479504. WoS ResearcherID: Q-1385-2015

Antonina G. Solopova, MD, Dr Sci Med, Prof.

Scopus Author ID: 6505479504. WoS ResearcherID: Q-1385-2015

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119991

https://orcid.org/0000-0002-0725-9686

Хизроева

Д. Х.

Khizroeva

J. Kh.

Хизроева Джамиля Хизриевна, д.м.н., профессор

119991 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Scopus Author ID: 57194547147. WoS ResearcherID: F-8384-2017

Jamilya Kh. Khizroeva, MD, Dr Sci Med, Prof.

Scopus Author ID: 57194547147. WoS ResearcherID: F-8384-2017

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119991

https://orcid.org/0000-0002-7756-8935

Григорьева

К. Н.

Grigoreva

K. N.

Григорьева Кристина Николаевна

119991 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Kristina N. Grigoreva, MD.

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119991

https://orcid.org/0000-0003-0764-4477

Гашимова

Н. Р.

Gashimova

N. R.

Гашимова Нилуфар Рамиль кызы

119991 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Nilufar R. Gashimova, MD.

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119991

https://orcid.org/0000-0002-2541-3843

Макацария

Н. А.

Makatsariya

N. A.

Макацария Наталия Александровна, к.м.н.

119991 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

WoS ResearcherID: F-8406-2017

Nataliya A. Makatsariya, MD, PhD.

WoS ResearcherID: F-8406-2017

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119991

https://orcid.org/0000-0002-3367-9844

Блинов

Д. В.

Blinov

D. V.

Блинов Дмитрий Владиславович, к.м.н.

119991 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

123056 Москва, 2-я Брестская ул., д. 5, с. 1—1а

141551 Московская область, деревня Голубое, Родниковая ул., стр. 6 к. 1

Scopus Author ID: 6701744871. WoS ResearcherID: E-8906-2017

Dmitry V. Blinov, MD, PhD, MBA

Scopus Author ID: 6701744871. WoS ResearcherID: E-8906-2017

4—10 Sadovaya-Triumfalnaya Str., Moscow 127006

5 bldg. 1-1a, 2-ya Brestskaya Str., Moscow 123056

6 bldg. 1, Rodnikovaya Str., Village Goluboe, Moscow region 141551

https://orcid.org/0000-0002-6619-6179

Галкин

В. Н.

Galkin

V. N.

Галкин Всеволод Николаевич, д.м.н., проф.

115446 Москва, Коломенский проезд, д. 4

Vsevolod N. Galkin - MD, Dr Sci Med, Prof.

4 Kolomenskiy Proezd, Moscow 115446

https://orcid.org/0009-0006-6018-4667

Шатилина

А. Ю.

Shatilina

A. Yu.

Шатилина Анастасия Юрьевна

119991 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Anastasia Yu. Shatilina

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119991

https://orcid.org/0009-0004-6971-8552

Ляднова

Е. М.

Lyadnova

E. M.

Ляднова Елизавета Михайловна

119991 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Elizaveta M. Lyadnova

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119991

https://orcid.org/0009-0004-8512-4498

Шульга

Н. А.

Shulga

N. A.

Шульга Наталия Александровна

Москва 119234, Ленинские горы, д. 1

Natalia A. Shulga

12, Leninskie Gory, Moscow 119234

https://orcid.org/0009-0005-3056-8603

Тогузаева

Л. Т.

Toguzaeva

L. T.

Тогузаева Лейля Тахировна

117997 Москва, ул. Академика Опарина, д. 4

Leylya T. Toguzaeva, MD.

4 Academika Oparina Str., Moscow 117997

https://orcid.org/0009-0001-2378-2477

Моркос

С.

Morkos

Моркос Саймон, д.м.н., проф.

Дубай, Хадаэк Мухаммед Бин Рашид, Эль-Барша

Simon Morkos, Dr Sci Med, Prof.

Al Barsha, Khadaek Mohammed Bin Rashid, Dubai

https://orcid.org/0000-0002-9899-9910

Гри

Ж.-К.

Gris

J.-C.

Гри Жан-Кристоф, д.м.н., проф.

119991 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Франция, 34090 Монпелье, ул. Огюста Бруссоне, д. 163

Scopus Author ID: 7005114260. WoS ResearcherID: AAA-2923-2019

Jean-Christophe Gris, MD, Dr Sci Med, Prof.

Scopus Author ID: 7005114260. WoS ResearcherID: AAA-2923-2019

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119991

163 Rue Auguste Broussonnet, Montpellier 34090, France

https://orcid.org/0000-0002-9576-1368

Элалами

И.

Elalamy

Элалами Исмаил, д.м.н., проф.

119991 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Франция, 75006 Париж, Улица медицинского факультета, д. 12

Франция, 75020 Париж, Китайская улица, д. 4

Scopus Author ID: 7003652413. WoS ResearcherID: AAC-9695-2019

Ismail Elalamy, MD, Dr Sci Med, Prof.

Scopus Author ID: 7003652413. WoS ResearcherID: AAC-9695-2019

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119991

12 Rue de l’Ecole de Medecine, Paris 75006, France

4 Rue de la Chine, Paris 75020, France

Геротзиафас

Г.

Gerotziafas

Геротзиафас Григориос, д.м.н., проф.

119991 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Франция, 75006 Париж, Улица медицинского факультета, д. 12

Франция, 75020 Париж, Китайская улица, д. 4

Grigories Gerotziafas, MD, Dr Sci Med, Prof.

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119991

12 Rue de l’Ecole de Medecine, Paris 75006, France

4 Rue de la Chine, Paris 75020, France

https://orcid.org/0000-0001-7415-4633

Макацария

А. Д.

Makatsariya

A. D.

Макацария Александр Давидович, д.м.н., проф., академик РАН

119991 Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Scopus Author ID: 57222220144. WoS ResearcherID: M-5660-2016

Alexander D. Makatsariya, MD, Dr Sci Med, Prof., Academician of RAS

Scopus Author ID: 57222220144. WoS ResearcherID: M-5660-2016

8 bldg. 2, Trubetskaya Str., Moscow 119991

ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет)РоссияSechenov UniversityRussian Federation

Институт Превентивной и Социальной Медицины; АНО ДПО «Московский медико-социальный институт имени Ф.П. Гааза»; ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр медицинской реабилитации и курортологии Федерального медико-биологического агентства»Россияinstitute for Preventive and Social Medicine; Moscow Haass Medical - Social Institute; Federal Scientific and Clinical Center for Medical Rehabilitation and BalneologyRussian Federation

ГБУЗ «Городская клиническая больница имени С.С. Юдина Департамента здравоохранения города Москвы»РоссияYudin City Clinical Hospital, Moscow Healthcare DepartmentRussian Federation

ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова»РоссияLomonosov Moscow State UniversityRussian Federation

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской ФедерацииРоссияAcademician Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Health Ministry of Russian FederationRussian Federation

Больница Аль-ЗахраОбъединенные Арабские ЭмиратыAl Zahra HospitalUnited Arab Emirates

ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет); Университет МонпельеРоссияSechenov University; University of MontpellierRussian Federation

ФГАОУ ВО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет); Медицинский Университет Сорбонны; Госпиталь ТенонРоссияSechenov University; Medicine Sorbonne University; Hospital TenonRussian Federation

2024

10012025

186835846

Copyright © Slukhanchuk E.V., Bitsadze V.O., Solopova A.G., Khizroeva J.K., Grigoreva K.N., Gashimova N.R., Makatsariya N.A., Blinov D.V., Galkin V.N., Shatilina A.Y., Lyadnova E.M., Shulga N.A., Toguzaeva L.T., Morkos S., Gris J., Elalamy I., Gerotziafas G., Makatsariya A.D., 2025

2025

Слуханчук Е.В., Бицадзе В.О., Солопова А.Г., Хизроева Д.Х., Григорьева К.Н., Гашимова Н.Р., Макацария Н.А., Блинов Д.В., Галкин В.Н., Шатилина А.Ю., Ляднова Е.М., Шульга Н.А., Тогузаева Л.Т., Моркос С., Гри Ж., Элалами И., Геротзиафас Г., Макацария А.Д.

Slukhanchuk E.V., Bitsadze V.O., Solopova A.G., Khizroeva J.K., Grigoreva K.N., Gashimova N.R., Makatsariya N.A., Blinov D.V., Galkin V.N., Shatilina A.Y., Lyadnova E.M., Shulga N.A., Toguzaeva L.T., Morkos S., Gris J., Elalamy I., Gerotziafas G., Makatsariya A.D.

Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.

This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.

https://www.gynecology.su/jour/article/view/2288

Cancer patients are at risk of developing arterial and venous thrombosis during chemotherapy (CT) and after its cessation. A prothrombotic risk may arise via pathogenetic pathways such as activation of external and internal coagulation pathways, decreased anticoagulant levels, platelet activation, fibrinolysis blockade, etc. Chemotherapeutic agents exert direct cytotoxicity, as well as indirectly suppress cellular processes necessary for tumor cell proliferation. CT-related cytotoxicity act on both tumor and healthy body cells. Available targeted drugs with improved selectivity for tumor cells are also associated with thrombosis risk. Low molecular weight heparins, which effectively reduce the risk of venous thromboembolism, have not yet been officially recommended for routine use during CT. Here, we discuss the prothrombotic effects of various antitumor agents aimed at gaining deeper understanding of the underlying mechanisms that may allow to develop new strategies for prevention and treatment of such formidable complications.

Онкологические пациенты находятся в зоне риска артериальных и венозных тромбозов на фоне проведения курсов химиотерапии (ХТ) как в процессе проведения, так и по ее окончании. Патогенетическими путями реализации протромботического риска являются активация внешних и внутренних путей коагуляции, снижение уровня антикоагулянтов, активация тромбоцитов, блок фибринолиза и др. Химиотерапевтические агенты обладают прямой цитотоксичностью, а также опосредованной, подавляя клеточные процессы, необходимые для пролиферации опухолевых клеток. Цитотоксичность ХТ направлена как на опухолевые, так и на здоровые клетки организма. Современные таргетные препараты, обладающие улучшенной селективностью в отношении опухолевых клеток, также связаны с риском тромбоза. Низкомолекулярные гепарины, эффективно снижающие риск венозной тромбоэмболии, до настоящего времени официально не рекомендованы для рутинного использования на фоне ХТ. В данной статье рассмотрены протромботические эффекты различных противоопухолевых агентов. Более глубокое понимание механизмов в дальнейшем позволит разработать новые стратегии профилактики и лечения этих грозных осложнений.

раквенозная тромбоэмболиятромбозхимиотерапияХТ

cancervenous thromboembolismthrombosischemotherapyСТ

References1

Elyamany G., Alzahrani A.M., Bukhary E. Cancer-associated thrombosis: an overview. Clin Med Insights Oncol. 2014;8:129-37. https://doi.org/10.4137/cmo.s18991.

Heit J.A., Silverstein M.D., Mohr D.N. et al. Risk factors for deep vein thrombosis and pulmonary embolism: a population-based case-control study. Arch Intern Med. 2000;160(6):809-15. https://doi.org/10.1001archinte.160.6.809.

Blom J.W., Vanderschoot J., Oostindier M. et al. Incidence of venous thrombosis in a large cohort of 66 329 cancer patients: results of a record linkage study. J Thromb Haemost. 2006;4(3):529-35. https://doi.org/10.1111/j.1538-7836.2006.01804.x.

Khorana A.A., Francis C.W., Culakova E., Lyman G.H. Risk factors for chemotherapy-associated venous thromboembolism in a prospective observational study. Cancer. 2005;104(12):2822-9. https://doi.org/10.1002/cncr.21496.

Duggan C., Marriott K., Edwards R., Cuzick J. Inherited and acquired risk factors for venous thromboembolic disease among women taking tamoxifen to prevent breast cancer. J Clin Oncol. 2003;21(19):3588-93. https://doi.org/10.1200/JCO.2003.10.111.

Fisher B., Dignam J., Emir B. al. Tamoxifen and chemotherapy for lymph node-negative, estrogen receptor-positive breast cancer. J Natl Cancer Inst. 1997;89(22):1673-82. https://doi.org/10.1093/jnci/89.22.1673.

Clahsen P.C., Van de Velde C., Julien J.-P. et al. Thromboembolic complications after perioperative chemotherapy in women with early breast cancer: a European Organization for Research and Treatment of Cancer Breast Cancer Cooperative Group study. J Clin Oncol. 1994;12(6):1266-71. https://doi.org/10.1200/JCO.1994.12.6.1266.

Goodnough L.T., Saito H., Manni A. et al. Increased incidence of thromboembolism in stage IV breast cancer patients treated with a five-drug chemotherapy regimen. Cancer. 1984;54(7):1264-8. https://doi.org/10.1002/1097-0142(19841001)54:7<1264::aid-cncr2820540706>3.0.co;2-r.

Cantwell B., Carmichael J., Ghani S.E., Harris A.L. Thromboses and thromboemboli in patients with lymphoma during cytotoxic chemotherapy. BMJ. 1988;297(6642):179-80. https://doi.org/10.1136/bmj.297.6642.179.

Rickles F.R., Levine M.N. Epidemiology of thrombosis in cancer. Acta Haematol. 2001;106(1-2):6-12. https://doi.org/10.1159/000046583.

Lubiniecki G.M., Berlin J.A., Weinstein R.B., Vaughn D.J. Thromboembolic events with estramustine phosphate-based chemotherapy in patients with hormone-refractory prostate carcinoma: results of a meta-analysis. Cancer. 2004;101(12):2755-9. https://doi.org/10.1002/cncr.20673.

Kuenen B.C., Rosen L., Smit E.F. et al. Dose-finding and pharmacokinetic study of cisplatin, gemcitabine, and SU5416 in patients with solid tumors. J Clin Oncol. 2002;20(6):1657-67. https://doi.org/10.1200/JCO.2002.20.6.1657.

Palumbo A., Bertola A., Musto P. et al. Oral melphalan, prednisone, and thalidomide for newly diagnosed patients with myeloma. Cancer. 2005;104(7):1428-33. https://doi.org/10.1002/cncr.21342.

Wang M., Dimopoulos M.A., Chen C. et al. Lenalidomide plus dexamethasone is more effective than dexamethasone alone in patients with relapsed or refractory multiple myeloma regardless of prior thalidomide exposure. Blood. 2008;112(12):4445-51. https://doi.org/10.1182/blood-2008-02-141614.

Rajkumar S.V., Blood E., Vesole D. et al. Phase III clinical trial of thalidomide plus dexamethasone compared with dexamethasone alone in newly diagnosed multiple myeloma: a clinical trial coordinated by the Eastern Cooperative Oncology Group. J Clin Oncol. 2006;24(3):431-6. https://doi.org/10.1200/JCO.2005.03.0221.

Glasmacher A., Hahn C., Hoffmann F. M, et al. A systematic review of phase-II trials of thalidomide monotherapy in patients with relapsed or refractory multiple myeloma. Br J Haematol. 2006;132(5):584-93. https://doi.org/10.1111/j.1365-2141.2005.05914.x.

Lee C.-K., Barlogie B., Munshi N. et al. DTPACE: an effective, novel combination chemotherapy with thalidomide for previously treated patients with myeloma. J Clin Oncol. 2003;21(14):2732-9. https://doi.org/10.1200/JCO.2003.01.055.

Steurer M., Sudmeier I., Stauder R., Gastl G. Thromboembolic events in patients with myelodysplastic syndrome receiving thalidomide in combination with darbepoietin-alpha. Br J Haematol. 2003;121(1):101-3. https://doi.org/10.1046/j.1365-2141.2003.04252.x.

Palladini G., Russo P., Milani P. et al. A phase II trial of cyclophosphamide, lenalidomide and dexamethasone in previously treated patients with AL amyloidosis. Haematologica. 2013;98(3):433-6. https://doi.org/10.3324/haematol.2012.073593.

van Es N., Sturk A., Middeldorp S., Nieuwland R. Effects of cancer on platelets. Semin Oncol. 2014;41(3):311-8. https://doi.org/10.1053/j.seminoncol.2014.04.015.

Thaler J., Pabinger I., Sperr W.R., Ay C. Clinical evidence for a link between microparticle-associated tissue factor activity and overt disseminated intravascular coagulation in patients with acute myelocytic leukemia. Thromb Res. 2014;133(3):303-5. https://doi.org/10.1016/j.thromres.2013.12.029.

Swystun L.L., Mukherjee S., Liaw P.C. Breast cancer chemotherapy induces the release of cell-free DNA, a novel procoagulant stimulus. J Thromb Haemost. 2011;9(11):2313-21. https://doi.org/10.1111/j.1538-7836.2011.04465.x.

Kirwan C.C., Mccollum C.N., McDowell G., Byrne G. Investigation of proposed mechanisms of chemotherapy-induced venous thromboembolism: endothelial cell activation and procoagulant release due to apoptosis. Clin Appl Thromb Hemost. 2015;21(5):420-7. https://doi.org/10.1177/1076029615575071.

Chen L., Deng H., Cui H. et al. Inflammatory responses and inflammation-associated diseases in organs. Oncotarget. 2018;9(6):7204-18. https://doi.org/10.18632/oncotarget.23208.

Chen L., Deng H., Cui H. et al. Inflammatory responses and inflammation- associated diseases in organs. Oncotarget. 2018;9(6):7204-18. https://doi.org/10.18632/oncotarget.23208.

Mo J., Zhang D., Yang R. Expression of P-selectin, VCAM-1, and PSGL-1 in traumatic deep venous thrombosis. Int J Clin Exp Pathol. 2016;9(3):3403-9.

Feng Y., Li X., Xiao J. et al. ADAMTS13: more than a regulator of thrombosis. Int J Hematol. 2016;104(5):534-9. https://doi.org/10.1007/s12185-016-2091-2.

Бицадзе В.О., Слуханчук Е.В., Хизроева Д.Х. и др. Внеклеточные ловушки нейтрофилов (NETs) в патогенезе тромбоза и тромбовоспа-лительных заболеваний. Вестник Российской академии медицинских наук. 2021;76(1):75-85. https://doi.org/10.15690/vramn1395.

Bitsadze V.O., Slukhanchuk E.V., Khizroeva J.Kh. et al. Neutrophil extracellular traps (NETs) in the pathogenesis of thrombosis and thromboinflammatory diseases. [Vnekletochnye lovushki nejtrofilov (NETs) v patogeneze tromboza i trombovospalitel'nyh zabolevanij]. Vestnik Rossijskoj akademii medicinskih nauk. 2021;76(1):75-85. (In Russ.). https://doi.org/10.15690/vramn1395.

Izzedine H., Isnard-Bagnis C., Launay-Vacher V. Gemcitabine-induced thrombotic microangiopathy: a systematic review. Nephrol Dial Transplant. 2006;21(11):3038-45. https://doi.org/10.1093/ndt/gfl507.

Ohtsu H., Dempsey P.J., Eguchi S. ADAMs as mediators of EGF receptor transactivation by G protein-coupled receptors. Am J Physiol Cell Physiol. 2006;291(1):C1-C10. https://doi.org/10.1152/ajpcell.00620.2005.

Choi M.K., Hong J.Y., Jang J.H., Lim H.Y. TTP-HUS associated with sunitinib. Cancer Res Treat. 2008;40(4):211-3. https://doi.org/10.4143/crt.2008.40.4.211.

Ojeda-Uribe M., Merieau S., Guillon M. et al. Secondary thrombotic microangiopathy in two patients with Philadelphia-positive hematological malignancies treated with imatinib mesylate. J Oncol Pharm Pract. 2016;22(2):361-70. https://doi.org/10.1177/1078155214568580.

Biss T., Avery P., Williams M. et al. The VKORC1 and CYP2C9 genotypes are associated with over-anticoagulation during initiation of warfarin therapy in children. J Thromb Haemost. 2013;11(2):373-5. https://doi.org/10.1111/jth.12072.

Terrell D., Williams L., Vesely S. et al. The incidence of thrombotic thrombocytopenic purpura-hemolytic uremic syndrome: all patients, idiopathic patients, and patients with severe ADAMTS-13 deficiency. J Thromb Haemost. 2005;3(7):1432-6. https://doi.org/10.1111/j.1538-7836.2005.01436.x.

Okano E., Ko S., Kanehiro H. et al. ADAMTS13 activity decreases after hepatectomy, reflecting a postoperative liver dysfunction. Hepatogastroenterology. 2010;57(98):316-20.

Liu L., Choi H., Bernardo A. et al. Platelet-derived VWF-cleaving metalloprotease ADAMTS-13. J Thromb Haemost. 2005;3(11):2536-44. https://doi.org/10.1111/j.1538-7836.2005.01561.x.

Sato N., Tasaki T., Noguchi H. et al.The pathological challenge of establishing a precise diagnosis for pulmonary tumour thrombotic microangiopathy: identification of new diagnostic criteria. Histopathology. 2019;74(6):892-901. https://doi.org/10.1111/his.13813.

Turner N.A., Nolasco L., Ruggeri Z.M., Moake J.L. Endothelial cell ADAMTS-13 and VWF: production, release, and VWF string cleavage. Blood. 2009;114(24):5102-11. https://doi.org/10.1182/blood-2009-07-231597.

Van Es N., Le Gal G., Otten H.-M. et al. Screening for occult cancer in patients with unprovoked venous thromboembolism: a systematic review and meta-analysis of individual patient data. Ann Intern Med. 2017;167(6):410-7. https://doi.org/10.7326/M17-0868.

Lee M., Rodansky E.S., Smith J.K., Rodgers G.M. ADAMTS13 promotes angiogenesis and modulates VEGF-induced angiogenesis. Microvas Res. 2012;84(2):109-15. https://doi.org/10.1016/j.mvr.2012.05.004.

Feys H., Liu F., Dong N. et al. ADAMTS-13 plasma level determination uncovers antigen absence in acquired thrombotic thrombocytopenic purpura and ethnic differences. J Thromb Haemost. 2006;4(5):955-62. https://doi.org/10.1111/j.1538-7836.2006.01833.x.

Kearon C., Akl E.A., Ornelas J. et al. Antithrombotic therapy for VTE disease: CHEST guideline and expert panel report. Chest. 2016;149(2):315-52. https://doi.org/10.1016/j.chest.2015.11.026.

Hedrick C.C., Malanchi I. Neutrophils in cancer: heterogeneous and multifaceted. Nat Rev Immunol. 2022;22(3):173-87. https://doi.org/10.1038/s41577-021-00571-6.

Kan M., Imaoka H., Watanabe K. et al. Chemotherapy-induced neutropenia as a prognostic factor in patients with pancreatic cancer treated with gemcitabine plus nab-paclitaxel: a retrospective cohort study. Cancer Chemother Pharmacol. 2020;86(2):203-10. https://doi.org/10.1007/s00280-020-04110-3.

Kasi P.M., Grothey A. Chemotherapy-induced neutropenia as a prognostic and predictive marker of outcomes in solid-tumor patients. Drugs. 2018;78:737-45. https://doi.org/10.1007/s40265-018-0909-3.

Zhang Y., Guoqiang L., Sun M., Lu X. Targeting and exploitation of tumor-associated neutrophils to enhance immunotherapy and drug delivery for cancer treatment. Cancer Biol Med. 2020;17(1):32—43. https://doi.org/10.20892/j.issn.2095-3941.2019.0372.

Schwarzenbach H., Hoon D.S., Pantel K. Cell-free nucleic acids as biomarkers in cancer patients. Nat Rev Cancer. 2011;11(6):426—37. https://doi.org/10.1038/nrc3066.

Lee Y.J., Yoon K.-A., Han J.-Y. et al. Circulating cell-free DNA in plasma of never smokers with advanced lung adenocarcinoma receiving gefitinib or standard chemotherapy as first-line therapy circulating DNA in prognosis of advanced NSCLC. Clin Cancer Res. 2011;17(15):5179—87. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-11-0400.

Слуханчук Е.В., Бицадзе В.О., Солопова А.Г. и др. Маркеры внеклеточных ловушек нейтрофилов у женщин со злокачественными новообразованиями репродуктивной системы, получавших хирургическое лечение и адъювантную терапию. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2023;17(4):420-32. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2023.432.

Slukhanchuk E.V., Bitsadze V.O., Solopova A.G. et al. Neutrophil extracellular traps-associated markers in malignant neoplasms of the female reproductive system after surgical treatment and adjuvant chemotherapy. [Markery vnekletochnyh lovushek nejtrofilov u zhenshchin so zlokachestvennymi novoobrazovaniyami reproduktivnoj sistemy, poluchavshih hirurgicheskoe lechenie i ad"yuvantnuyu terapiyu]. Obstetrics, Gynecology and Reproduction. 2023;17(4):420-32. (In Russ.). https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2023.432.

Demers M., Wagner D.D.. Neutrophil extracellular traps: A new link to cancer-associated thrombosis and potential implications for tumor progression. Oncoimmunology. 2013;2(2):e22946. https://doi.org/10.4161/onci.22946.

Holdenrieder S., Stieber P., von Pawel J. et al. Circulating nucleosomes predict the response to chemotherapy in patients with advanced non-small cell lung cancer. Clin Cancer Res. 2004;10(18 Pt 1):5981—7. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-04-0625.

Fuchs T.A., Kremer Hovinga J.A., Schatzberg D. et al. Circulating DNA and myeloperoxidase indicate disease activity in patients with thrombotic microangiopathies. Blood. 2012;120(6):1157-64. https://doi.org/10.1182/blood-2012-02-412197.

Elmoamly S., Mattar M., Yacoub M.F., Afif A. Can biomarkers of coagulation, platelet activation, and inflammation predict venous thromboembolism in patients with haematological malignancies? Acta Haematol. 2019;141(4):245-53. https://doi.org/10.1159/000496914.

Marconi S., Croce M., Chiorino G. et al. A circulating risk score, based on combined expression of exo-miR-130a-3p and fibrinopeptide a, as predictive biomarker of relapse in resectable non-small cell lung cancer patients. Cancers. 2022;14(14):3412. https://doi.org/10.3390/cancers14143412.

Edwards R.L., Klaus M., Matthews E. et al. Heparin abolishes the chemotherapy-induced increase in plasma fibrinopeptide A levels. Am J Med. 1990;89(1):25-8. https://doi.org/10.1016/0002-9343(90)90093-s.

Zurborn K.H., Gram J., Glander K. et al. Influence of cytostatic treatment on the coagulation system and fibrinolysis in patients with non-Hodgkin's lymphomas and acute leukemias. Eur J Haematol. 1991;47(1):55-9.

Stahli B.E., Camici G.G., Steffel J. et al. Paclitaxel enhances thrombin-induced endothelial tissue factor expression via c-Jun terminal NH2 kinase activation. Circ Res. 2006;99(2):149-55. https://doi.org/10.1161/01.RES.0000233379.92010.fd.

Stahli B.E., Camici G.G., Steffel J. et al. Paclitaxel enhances thrombin- induced endothelial tissue factor expression via c-Jun terminal NH2 kinase activation. Circ Res. 2006;99(2):149-55. https://doi.org/10.1161/01.RES.0000233379.92010.fd.

Adamson I.Y., Bowden D.H. The pathogenesis of bleomycin-induced pulmonary fibrosis in mice. Am J Pathol. 1974;77(2):185-97.

Bertomeu M., Gallo S., Lauri D. et al. Chemotherapy enhances endothelial cell reactivity to platelets. Clin Exp Metastasis. 1990;8(6):511-8. https://doi.org/10.1007/BF00135874.

Bertomeu M., Gallo S., Lauri D. et al. Chemotherapy enhances endothelial cell reactivity to platelets. Clin Exp Metastasis. 1990;8(6):511-8. https:// doi.org/10.1007/BF00135874.

Sobierajska K., Ciszewski W.M., Sacewicz-Hofman I., Niewiarowska J. Endothelial cells in the tumor microenvironment. Adv Exp Med Biol. 2020;1234:71-86. https://doi.org/10.1007/978-3-030-37184-5_6.

Li C.-X., He Q., Wang Z.-Y. et al. Risk assessment of venous thromboembolism in head and neck cancer patients and its establishment of a prediction model. Head Neck. 2023;45(10):2515-24. https://doi.org/10.1002/hed.27475.

van der Schoot G.G.F., Ormel H.L., Westerink N.-D.L. et al. Physical exercise in patients with testicular cancer treated with bleomycin, etoposide and cisplatin chemotherapy: pulmonary and vascular endothelial function—an exploratory analysis. J Cancer Res Clin Oncol. 2023;149(19):17467-78. https://doi.org/10.1007/s00432-023-05469-5.

Hamza M.S., Mousa S.A. Cancer-associated thrombosis: risk factors, molecular mechanisms, future management. Clin Appl Thromb Hemost. 2020;26:1076029620954282. https://doi.org/10.1177/1076029620954282.

Aklilu A.M., Shirali A.C. Chemotherapy-associated thrombotic microangiopathy. Kidney360. 2023;4(3):409-22. https://doi.org/10.34067/KID.0000000000000061.

Prandoni P., Campello E., editors. Venous thromboembolism in cancer patients undergoing chemotherapy: risk factors and prevention. Semin Thromb Hemost. 2021;47(8):914-9. https://doi.org/10.1055/s-0040-1718927.

Yang V., Gouveia M.J., Santos J. et al. Breast cancer: insights in disease and influence of drug methotrexate. RSC Med Chem. 2020;11(6):646-64. https://doi.org/10.1039/d0md00051e.

Sulimai N.H., Brown J., Lominadze D. Fibrinogen, fibrinogen-like 1 and fibrinogen-like 2 proteins, and their effects. Biomedicines. 2022;10(7):1712. https://doi.org/10.3390/biomedicines10071712.

Fulcher J., Carrier M. Thromboembolism prophylaxis during L-asparaginase therapy in acute lymphoblastic leukemia-time to reconsider current approaches? Thromb Res. 2020;188:100-2. https://doi.org/10.1016/j.thromres.2020.02.015.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.